摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-8页 |
第一章 绪论 | 第11-25页 |
1.1 肝再生 | 第11-16页 |
1.1.1 引言 | 第11页 |
1.1.2 肝再生过程 | 第11-13页 |
1.1.3 肝再生的三个阶段 | 第13-16页 |
1.1.4 肝脏巨噬细胞在肝再生过程中的作用 | 第16页 |
1.2 PTEN | 第16-21页 |
1.2.1 引言 | 第16-17页 |
1.2.2 PTEN的作用机制 | 第17-18页 |
1.2.3 PTEN的细胞生物学作用 | 第18-21页 |
1.3 PTEN与肝再生的研究进展 | 第21-22页 |
1.4 PTEN与巨噬细胞的研究进展 | 第22-25页 |
第二章 实验材料和实验方法 | 第25-49页 |
2.1 引言 | 第25-26页 |
2.2 实验材料 | 第26-29页 |
2.2.0 实验小鼠 | 第26页 |
2.2.1 实验试剂和材料 | 第26-28页 |
2.2.2 实验仪器 | 第28-29页 |
2.3 实验方法 | 第29-49页 |
2.3.1 小鼠的基因组提取及基因型鉴定 | 第29-31页 |
2.3.2 小鼠2/3肝切除(PHx)手术 | 第31-32页 |
2.3.3 小鼠肝脏巨噬细胞的灌流分离 | 第32-34页 |
2.3.4 血清ALT水平检测 | 第34页 |
2.3.5 肝脏病理制片(取材,固定,脱水,包埋,切片) | 第34-36页 |
2.3.6 肝脏病理制片HE染色 | 第36页 |
2.3.7 肝脏病理制片免疫组织化学染色 | 第36-38页 |
2.3.8 小鼠肝脏组织或细胞中总RNA提取、逆转录反应以及Real-Time PCR反应 | 第38-40页 |
2.3.9 小鼠肝脏组织或细胞中蛋白质的提取、BCA定量以及Western Blot检测蛋白水平表达 | 第40-45页 |
2.3.10 小鼠骨髓诱导巨噬细胞及巨噬细胞极化 | 第45-46页 |
2.3.11 流式细胞仪检测BMDM表型 | 第46-47页 |
2.3.12 有丝分裂指数的检测 | 第47-49页 |
第三章 实验结果 | 第49-59页 |
3.1 在2/3肝切除(PHx)后肝脏巨噬细胞中的PTEN表达下调 | 第49-50页 |
3.2 髓系细胞PTEN特异性敲除小鼠在2/3肝切除(PHx)后的细胞周期行进加快 | 第50-51页 |
3.3 髓系细胞PTEN特异性敲除小鼠在2/3肝切除(PHx) 48h时的有丝分裂指数(Mitotic index)增加 | 第51-53页 |
3.4 髓系细胞PTEN特异性敲除小鼠在2/3肝切除(PHx)后肝脏损伤无明显变化 | 第53-54页 |
3.5 髓系细胞PTEN特异性敲除小鼠在2/3肝切除(PHx)后细胞因子应答无明显变化 | 第54-55页 |
3.6 髓系细胞PTEN特异性敲除小鼠的BMDM倾向于M2表型 | 第55-59页 |
第四章 讨论 | 第59-63页 |
参考文献 | 第63-69页 |
致谢 | 第69-70页 |
附录 | 第70页 |