摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
1 文献综述 | 第11-22页 |
1.1 小麦株型研究进展 | 第11-13页 |
1.2 小麦分蘖特性的研究 | 第13-14页 |
1.2.1 小麦分蘖的形成 | 第13-14页 |
1.2.2 小麦分蘖节概述 | 第14页 |
1.3 分蘖数和分蘖角度遗传基础 | 第14-19页 |
1.3.1 分蘖数的遗传基础 | 第15-17页 |
1.3.2 分蘖角度的遗传基础 | 第17-19页 |
1.4 TAC1与TAC1-like基因 | 第19-21页 |
1.5 立题依据 | 第21-22页 |
2 材料与方法 | 第22-36页 |
2.1 实验材料 | 第22页 |
2.2 实验方法 | 第22-36页 |
2.2.1 小麦表型的测量 | 第22页 |
2.2.2 小麦组织的采集 | 第22-23页 |
2.2.3 小麦总RNA的提取 | 第23-24页 |
2.2.4 小麦cDNA第一链的合成 | 第24页 |
2.2.5 小麦TaTAC1的cDNA扩增 | 第24-26页 |
2.2.6 目的片段的回收纯化 | 第26页 |
2.2.7 目的片段与T载体的连接 | 第26-27页 |
2.2.8 感受态细胞制备 | 第27页 |
2.2.9 大肠杆菌DH5α转化 | 第27-28页 |
2.2.10 阳性克隆检测及测序 | 第28页 |
2.2.11 cDNA序列生物信息学分析 | 第28-29页 |
2.2.12 荧光定量 | 第29-33页 |
2.2.12.1 荧光定量引物设计 | 第29-30页 |
2.2.12.2 荧光定量目的片段的获得 | 第30页 |
2.2.12.3 质粒提取 | 第30-31页 |
2.2.12.4 标准品的制备 | 第31-32页 |
2.2.12.5 荧光定量RT-qPCR | 第32页 |
2.2.12.6 荧光定量数据分析 | 第32-33页 |
2.2.13 亚细胞定位 | 第33-36页 |
2.2.13.1 目的片段的获得 | 第33-34页 |
2.2.13.2 质粒提取 | 第34页 |
2.2.13.3 质粒酶切 | 第34-35页 |
2.2.13.4 双酶切片段的连接反应 | 第35页 |
2.2.13.5 金粉的制备 | 第35页 |
2.2.13.6 质粒DNA-金粉的制备 | 第35-36页 |
2.2.13.7 基因枪轰击洋葱表皮细胞 | 第36页 |
3 结果与分析 | 第36-53页 |
3.1 小麦分蘖角度测量结果 | 第36-37页 |
3.2 TAC1基因cDNA序列扩增结果 | 第37-38页 |
3.2.1 小麦RNA的提取与检测 | 第37-38页 |
3.2.2 小麦TaTAC1基因cDNA序列的同源克隆 | 第38页 |
3.3 小麦TaTAC1基因生物信息学分析 | 第38-46页 |
3.3.1 小麦TaTAC1基因cDNA全长序列分析 | 第38-41页 |
3.3.2 小麦TaTAC1氨基酸序列分析 | 第41-44页 |
3.3.3 小麦TaTAC1蛋白二级结构预测分析 | 第44-45页 |
3.3.4 小麦TaTAC1基因同源性分析 | 第45-46页 |
3.4 小麦TaTAC1定量表达分析 | 第46-51页 |
3.4.1 定量引物的特异性检测 | 第46-47页 |
3.4.2 荧光定量目的基因与内参基因的标准曲线 | 第47-49页 |
3.4.3 小麦TaTAC1基因定量表达分析 | 第49-51页 |
3.5 小麦TaTAC1亚细胞定位 | 第51-53页 |
3.5.1 重组质粒的构建过程 | 第51-52页 |
3.5.2 基因枪轰击洋葱表皮细胞 | 第52-53页 |
4 讨论 | 第53-55页 |
5 结论 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-63页 |
致谢 | 第63页 |