| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 第1章 引言 | 第12-26页 |
| ·研究意义 | 第12-13页 |
| ·研究背景 | 第13-23页 |
| ·创伤敷料 | 第13-14页 |
| ·创伤愈合 | 第14-23页 |
| ·本课题研究思路 | 第23-26页 |
| ·处方的筛选 | 第23页 |
| ·液体创可贴相关性能的研究 | 第23页 |
| ·ICR小鼠全切除模型的制造 | 第23-24页 |
| ·创伤修复的研究 | 第24页 |
| ·创伤愈合机理的研究 | 第24-26页 |
| 第2章 液体创可贴处方的筛选 | 第26-30页 |
| ·实验材料 | 第26页 |
| ·实验方法 | 第26-28页 |
| ·不同处方液体创可贴的配制 | 第26-27页 |
| ·液体创可贴所成膜的厚度的测定 | 第27页 |
| ·机械性能的检测方法 | 第27-28页 |
| ·稳定性测定方法 | 第28页 |
| ·结果与分析 | 第28-29页 |
| ·厚度和机械性能的检测 | 第28页 |
| ·加速稳定性实验检测 | 第28-29页 |
| ·小结 | 第29-30页 |
| 第3章 液体创可贴的生物学特性 | 第30-46页 |
| ·实验材料 | 第30-31页 |
| ·实验方法 | 第31-39页 |
| ·主要试剂的配制 | 第32页 |
| ·刺激性实验 | 第32-35页 |
| ·无菌性 | 第35-36页 |
| ·抑菌性 | 第36页 |
| ·细胞活性和状态的考察——MTT测定 | 第36-39页 |
| ·结果与分析 | 第39-45页 |
| ·刺激性检测 | 第39-41页 |
| ·无菌性检测 | 第41页 |
| ·抑菌性检测 | 第41-42页 |
| ·细胞生长状态和细胞活性的检测 | 第42-45页 |
| ·小结 | 第45-46页 |
| 第4章 液体创可贴所成膜的物理学特性 | 第46-55页 |
| ·实验材料 | 第46-47页 |
| ·实验方法 | 第47-49页 |
| ·扫描电镜（SEM）检测 | 第47页 |
| ·液体创可贴在使用中最佳厚度的选择 | 第47页 |
| ·阻菌性测试 | 第47-48页 |
| ·水蒸气透过率 | 第48-49页 |
| ·接触角实验 | 第49页 |
| ·红外测定（FTIR） | 第49页 |
| ·实验结果与分析 | 第49-54页 |
| ·液体创可贴所成膜的直观图和SEM图 | 第49-50页 |
| ·液体创可贴在使用中最佳厚度的选择 | 第50页 |
| ·阻菌性检测 | 第50-52页 |
| ·水蒸气透过率 | 第52页 |
| ·接触角测定 | 第52-53页 |
| ·红外色谱测定 | 第53-54页 |
| ·小结 | 第54-55页 |
| 第5章 液体创可贴对小鼠皮肤全切除创伤的愈合作用及其作用机理的研究 | 第55-85页 |
| ·实验材料 | 第55-57页 |
| ·实验方法 | 第57-68页 |
| ·实验材料的处理和试剂的配制 | 第57页 |
| ·组织的获取 | 第57-58页 |
| ·皮肤组织的包埋和制片 | 第58-59页 |
| ·创伤愈合大小的观察 | 第59页 |
| ·创伤愈合机理的研究 | 第59-68页 |
| ·实验结果和分析 | 第68-84页 |
| ·创面愈合的经时过程 | 第68-69页 |
| ·TGF-β1 的变化 | 第69-72页 |
| ·中性粒细胞的变化 | 第72页 |
| ·HE染色 | 第72-75页 |
| ·炎症趋化因子CcL2 和细胞因子TNF-α的检测 | 第75-76页 |
| ·细胞增殖和迁移检测 | 第76页 |
| ·新生血管的检测 | 第76-78页 |
| ·成纤维细胞分化形成成肌纤维细胞的检测结果 | 第78页 |
| ·总胶原蛋白的沉积 | 第78-83页 |
| ·组织机械力量检测 | 第83-84页 |
| ·小结 | 第84-85页 |
| 总结与展望 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
| 附录 | 第95-107页 |
| 个人简历、发表的学术论文 | 第107页 |