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复极储备相关钾通道在心力衰竭时的变化及相互作用研究

中文摘要第1-8页
Abstract第8-19页
引言第19-34页
 第一节 心力衰竭时心源性猝死发生的研究背景及现况第19-20页
 第二节 动作电位在心力衰竭时变化的研究第20-21页
 第三节 复极储备与心力衰竭时心律失常的关系第21-22页
 第四节 延迟整流钾电流在复极储备中的作用第22-24页
 第五节 心衰模型的建立依据第24-26页
 第六节 细胞转染的基本原理及应用第26页
 第七节 RT-qPCR测定的基本原理及意义第26-28页
 第八节 Western Blot的基本原理及意义第28-29页
 第九节 膜片钳技术的基本原理及应用第29-30页
 第十节 研究目的及意义第30-34页
第一部分 兔心衰模型中复极储备通道mRNA变化机制的研究第34-83页
 第一章 实验方案第34-55页
  第一节 实验流程第34-35页
  第二节 实验对象第35页
  第三节 实验仪器及材料第35-37页
     ·建立心衰模型手术器材第35页
     ·提取RNA及RT-qPCR检测器材第35-36页
     ·兔心室肌细胞膜片钳检测相应设备第36-37页
  第四节 药品及试剂第37-38页
     ·建立心衰模型所需药品及试剂第37页
     ·提取RNA、RT-qPCR检测及膜片钳实验相关试剂第37-38页
  第五节 相关溶液配制第38-41页
  第六节 实验方法第41-55页
     ·实验分组第41-42页
     ·兔腹主动脉缩窄法建立心衰模型第42-44页
       ·兔腹主动脉缩窄术的操作步骤第42-44页
       ·兔心衰的评定标准第44页
     ·兔心室肌细胞分离第44-46页
     ·兔心室肌细胞总RNA制备及浓度测定第46-47页
       ·兔心室肌细胞总RNA的提取第46-47页
       ·RNA浓度测定与纯度判定第47页
     ·RT-qPCR的具体操作步骤及结果运算方法第47-50页
       ·逆转录的具体操作步骤第47-48页
       ·定量PCR的具体操作步骤第48-49页
       ·2~(-△△Ct)值的运算方法第49-50页
     ·全细胞膜片钳记录电流方法第50-52页
       ·兔单个心室肌细胞的预处理第50页
       ·全细胞膜片钳记录方法第50-51页
       ·诱发电流参数的设定及结果记录第51-52页
     ·统计学处理第52-55页
 第二章 实验结果第55-67页
  第一节 兔腹主动脉缩窄心衰模型建立的评定结果第55-58页
     ·兔腹主动脉缩窄心衰模型中一般情况的变化第55-56页
     ·兔腹主动脉缩窄心衰模型中心脏超声指标的变化第56-58页
  第二节 心衰对兔心室肌细胞I_(Kr)和I_(Ks)通道mRNA表达的影响第58-61页
     ·心衰对兔心室肌细胞KCNH2在mRNA水平表达的影响第58-59页
     ·心衰对兔心室肌细胞KCNQ1在mRNA水平表达的影响第59-61页
  第三节 钾通道抑制剂对心衰兔心室肌细胞复极储备相关离子流的影响第61-67页
     ·钾通道抑制剂对心衰兔心室肌细胞AP的影响第61-63页
     ·I_(Kr)通道抑制剂Dof对心衰兔心室肌细胞复极储备相关离子流的影响第63-67页
 第三章 讨论第67-80页
  第一节 兔腹主动脉缩窄心衰模型建立的效果评价第67-70页
     ·兔腹主动脉缩窄心衰模型中一般情况的变化第67-68页
     ·兔腹主动脉缩窄心衰模型中心脏超声指标的变化第68-70页
  第二节 心衰对兔心室肌细胞I_(Kr)和I_(Ks)通道mRNA表达的影响第70-73页
     ·心衰对兔心室肌细胞KCNH2在mRNA水平表达的影响第70-72页
     ·心衰对兔心室肌细胞KCNQ1在mRNA水平表达的影响第72-73页
  第三节 钾通道抑制剂对心衰兔心室肌细胞复极储备相关离子流的影响第73-77页
     ·钾通道抑制剂对心衰兔心室肌细胞AP的影响第73-75页
     ·I_(Kr)通道抑制剂Dof对心衰兔心室肌细胞复极储备相关离子流的影响第75-77页
       ·I_(Kr)通道抑制剂Dof对心衰兔心室肌细胞I_(Kr)电流的影响第75-76页
       ·I_(Kr)通道抑制剂Dof对心衰兔心室肌细胞I_(Ks)电流的影响第76-77页
  第四节 小结第77-80页
 第四章 结论第80-83页
第二部分 复极储备重要离子流I_(Ks)与I_(Kr)相互作用的研究第83-137页
 第一章 实验方案第83-110页
  第一节 实验流程第83-84页
  第二节 实验对象第84页
  第三节 实验仪器及材料第84-86页
     ·HEK293细胞培养及转染部分仪器及材料第84页
     ·RNA及蛋白提取及检测部分仪器及材料第84-85页
     ·全细胞膜片钳检测部分相应设备第85-86页
  第四节 药品及试剂第86-95页
     ·细胞培养及转染相关试剂第86-94页
     ·RNA及蛋白提取及检测相关试剂第94-95页
     ·全细胞膜片钳检测相关药物和试剂第95页
  第五节 相关溶液配制第95-97页
  第六节 实验方法第97-110页
     ·实验分组第97页
     ·HEK293细胞培养的操作步骤第97-99页
       ·细胞复苏第98页
       ·细胞冻存第98-99页
       ·细胞传代第99页
     ·HEK293细胞转染质粒的操作步骤第99-101页
       ·细胞计数第99-100页
       ·转染前细胞预处理第100页
       ·细胞转染第100-101页
     ·HEK293细胞RNA提取及RT-qPCR的具体步骤第101-103页
       ·HEK293细胞总RNA的提取第101-102页
       ·HEK293细胞总RNA浓度的测量及纯度的判定第102-103页
       ·RT-qPCR的具体操作步骤及结果运算第103页
     ·HEK293细胞蛋白提取及Western Blot的具体步骤第103-107页
       ·细胞总蛋白的提取第103-104页
       ·细胞总蛋白含量的测定第104-105页
       ·Western Blot的具体操作步骤第105-107页
     ·HEK293细胞全细胞膜片钳检测KCNQ1电流的具体操作第107页
     ·统计学处理第107-110页
 第二章 实验结果第110-125页
  第一节 KCNH2和KCNQ1质粒转染HEK293细胞后在mRNA水平的相互影响第110-115页
     ·HEK293细胞共转染各功能型KCNH2对KCNQ1基因mRNA表达的影响第110-111页
     ·HEK293细胞共转染KCNQ1对各功能型KCNH2基因mRNA表达的影响第111-115页
  第二节 KCNH2和KCNQ1质粒转染HEK293细胞后在蛋白水平的相互影响第115-119页
     ·HEK293细胞共转染各功能型KCNH2对KCNQ1在蛋白水平表达的影响第115-117页
     ·HEK293细胞共转染KCNQ1对各功能型KCNH2在蛋白水平表达的影响第117-119页
  第三节 HEK293细胞共转染各功能型KCNH2对KCNQ1电流的影响第119-125页
     ·共转染功能野生型质粒WT-KCNH2对KCNQ1电流的影响第119-121页
     ·共转染功能获得型质粒T618I-KCNH2对KCNQ1电流的影响第121-122页
     ·共转染功能缺失型质粒V535M-KCNH2对KCNQ1电流的影响第122-125页
 第三章 讨论第125-134页
  第一节 KCNH2和KCNQ1质粒转染HEK293细胞后在mRNA水平的相互影响第125-127页
     ·HEK293细胞共转染各功能型KCNH2对KCNQ1基因mRNA表达的影响第125-126页
     ·HEK293细胞共转染KCNQ1对各功能型KCNH2基因mRNA表达的影响第126-127页
  第二节 KCNH2和KCNQ1质粒转染HEK293细胞后在蛋白水平的相互影响第127-129页
     ·HEK293细胞共转染各功能型KCNH2对KCNQ1在蛋白水平表达的影响第127-128页
     ·HEK293细胞共转染KCNQ1对各功能型KCNH2在蛋白水平表达的影响第128-129页
  第三节 HEK293细胞共转染各功能型KCNH2对KCNQ1电流的影响第129-130页
     ·共转染功能野生型质粒WT-KCNH2对KCNQ1电流的影响第129-130页
     ·共转染功能突变型质粒T618I-KCNH2或V535M-KCNH2对KCNQ1电流的影响第130页
  第四节 小结第130-134页
 第四章 结论第134-137页
参考文献第137-146页
致谢第146-149页
附录第149-166页
 参考文献第159-166页
个人简历第166-167页

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