| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-15页 |
| 1 引言 | 第15-37页 |
| ·牛磺鹅去氧胆酸的研究概况 | 第15-17页 |
| ·牛磺鹅去氧胆酸的理化性质 | 第15页 |
| ·TCDCA的药理学研究概况 | 第15-17页 |
| ·胆汁酸的研究概况 | 第17-19页 |
| ·胆汁酸的来源 | 第17-18页 |
| ·胆汁酸的生理作用 | 第18页 |
| ·胆汁酸参与的信号通路 | 第18-19页 |
| ·胆汁酸的药用价值 | 第19页 |
| ·类风湿性关节炎的研究进展 | 第19-24页 |
| ·类风湿性关节炎的概述 | 第19-20页 |
| ·RA的发病机制 | 第20页 |
| ·关节炎动物模型的研究进展 | 第20-23页 |
| ·RA治疗药物的研究进展 | 第23-24页 |
| ·RA中关键细胞因子的研究进展 | 第24-27页 |
| ·肿瘤坏死因子α | 第25-26页 |
| ·白介素-1 | 第26页 |
| ·白介素-6 | 第26-27页 |
| ·白介素-10 | 第27页 |
| ·免疫细胞在RA中的作用 | 第27-29页 |
| ·成纤维样滑膜细胞 | 第27-28页 |
| ·滑膜巨噬细胞 | 第28页 |
| ·中性粒细胞 | 第28页 |
| ·滑膜B细胞 | 第28页 |
| ·滑膜T细胞 | 第28-29页 |
| ·巨噬细胞 | 第29页 |
| ·NF-κB的研究进展 | 第29-35页 |
| ·NF-κB系统的组成 | 第29-30页 |
| ·NF-κB的激活过程 | 第30-31页 |
| ·NF-κB的激活剂与抑制剂 | 第31页 |
| ·NF-κB的生物学功能 | 第31-33页 |
| ·NF-κB在RA发生发展过程中的作用 | 第33-34页 |
| ·抗NF-κB治疗RA的现状与展望 | 第34-35页 |
| ·研究的目的和意义 | 第35-37页 |
| 2 佐剂性关节炎大鼠模型的建立与评价 | 第37-43页 |
| ·试验材料 | 第37页 |
| ·试验动物 | 第37页 |
| ·药品与试剂 | 第37页 |
| ·主要仪器设备 | 第37页 |
| ·数据处理和统计学分析 | 第37页 |
| ·研究内容与方法 | 第37-39页 |
| ·AA大鼠模型的建立 | 第37-38页 |
| ·AA大鼠模型的评价 | 第38页 |
| ·AA大鼠模型成功率的检测 | 第38-39页 |
| ·结果 | 第39-42页 |
| ·AA模型发生发展过程中大鼠体重的变化 | 第39页 |
| ·AA模型发生发展过程中关节炎指数的变化 | 第39-40页 |
| ·AA模型发生发展过程中对侧脚足跖肿胀率的变化 | 第40-41页 |
| ·AA模型大鼠X-ray观察的变化 | 第41页 |
| ·AA模型大鼠成功率的检测 | 第41-42页 |
| ·讨论 | 第42页 |
| ·小结 | 第42-43页 |
| 3 TCDCA对AA模型大鼠的预防及治疗作用 | 第43-51页 |
| ·试验材料 | 第43页 |
| ·试验动物 | 第43页 |
| ·药品与试剂 | 第43页 |
| ·主要仪器设备 | 第43页 |
| ·数据处理和统计学分析 | 第43-44页 |
| ·研究内容与方法 | 第44-45页 |
| ·试验动物分组及给药方案 | 第44页 |
| ·TCDCA对AA模型大鼠预防及治疗作用的评价 | 第44-45页 |
| ·TCDCA对AA模型大鼠脾脏和胸腺指数的影响 | 第45页 |
| ·结果 | 第45-49页 |
| ·TCDCA对AA模型大鼠治疗作用的评价 | 第45-47页 |
| ·TCDCA对AA模型大鼠预防作用的评价 | 第47-48页 |
| ·TCDCA对AA模型大鼠脾脏指数和胸腺指数的影响 | 第48-49页 |
| ·讨论 | 第49-50页 |
| ·小结 | 第50-51页 |
| 4 TCDCA对AA模型大鼠关键细胞因子的影响 | 第51-81页 |
| ·试验材料 | 第51-52页 |
| ·试验动物 | 第51页 |
| ·药品与试剂 | 第51-52页 |
| ·主要仪器设备 | 第52页 |
| ·数据处理和统计学分析 | 第52页 |
| ·试验方法 | 第52-59页 |
| ·TCDCA对AA模型大鼠体内关键细胞因子表达的影响 | 第52-55页 |
| ·TCDCA对AA模型大鼠FLS内关键细胞因子表达的影响 | 第55-57页 |
| ·TCDCA对AA模型大鼠PMΦ细胞内关键细胞因子表达的影响 | 第57-59页 |
| ·结果 | 第59-78页 |
| ·TCDCA对AA模型大鼠体内关键细胞因子表达的影响 | 第59-69页 |
| ·TCDCA对AA模型大鼠FLS内关键细胞因子表达的影响 | 第69-74页 |
| ·TCDCA对AA模型大鼠PMΦ细胞内关键细胞因子表达的影响 | 第74-78页 |
| ·讨论 | 第78-81页 |
| ·TCDCA对AA模型大鼠血清和滑膜组织中关键细胞因子表达的影响 | 第78-79页 |
| ·TCDCA对AA模型大鼠FLS内关键细胞因子表达的影响 | 第79页 |
| ·TCDCA对AA模型大鼠PMΦ细胞内关键细胞因子表达的影响 | 第79-81页 |
| 5 TCDCA对AA大鼠FLS和PMΦ中NF-κ B活性表达的影响 | 第81-92页 |
| ·试验材料 | 第81-82页 |
| ·试验动物 | 第81页 |
| ·药品与试剂 | 第81页 |
| ·主要仪器设备 | 第81-82页 |
| ·数据处理和统计学分析 | 第82页 |
| ·研究内容与方法 | 第82-86页 |
| ·细胞的获取与试验分组 | 第82-83页 |
| ·总蛋白和细胞核蛋白的提取 | 第83-84页 |
| ·蛋白浓度的测定 | 第84页 |
| ·FLS和PMΦ细胞核内活化的NF-κ Bp65蛋白含量的检测 | 第84-85页 |
| ·FLS和PMΦ细胞中IκBα和p-IκBα蛋白表达的检测 | 第85-86页 |
| ·试验结果 | 第86-89页 |
| ·蛋白浓度的测定 | 第86-87页 |
| ·AA大鼠FLS细胞中活化的NF-κ B p65蛋白含量的测定 | 第87-88页 |
| ·AA大鼠PMΦ细胞中活化的NF-κBp65蛋白含量的测定 | 第88页 |
| ·TCDCA对AA大鼠FLS细胞中IκBα蛋白表达的影响 | 第88-89页 |
| ·TCDCA对AA大鼠PMΦ细胞中IκBα蛋白表达的影响 | 第89页 |
| ·讨论 | 第89-92页 |
| ·TCDCA对AA大鼠FLS细胞中活化的NF-κBp65蛋白表达量的影响 | 第90页 |
| ·TCDCA对AA大鼠FLS细胞中Iκ Bα蛋白降解的影响 | 第90-91页 |
| ·TCDCA对AA大鼠PMΦ细胞中活化的NF-κBp65和IκBα蛋白表达的影响 | 第91-92页 |
| 6 全文讨论 | 第92-95页 |
| 7 全文结论 | 第95页 |
| 8 本课题主要创新之处 | 第95-96页 |
| 致谢 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-105页 |
| 作者简介 | 第105页 |
