| 第一部分 | 第1-81页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 第一章 前言 | 第13-23页 |
| 1. 治疗性血管新生 | 第13-22页 |
| ·血管新生机制 | 第13-14页 |
| ·血管新生因子 | 第14-18页 |
| ·HIF-1 | 第14-15页 |
| ·炎症 | 第15页 |
| ·bFGF | 第15页 |
| ·VEGF | 第15-16页 |
| ·eNOS | 第16页 |
| ·PDGF | 第16-18页 |
| ·血管新生与中药治疗缺血性疾病 | 第18页 |
| ·血管生长因子给药途径与方法 | 第18-19页 |
| ·临床试验 | 第19-20页 |
| ·重组蛋白治疗 | 第19页 |
| ·基因治疗 | 第19-20页 |
| ·细胞治疗 | 第20页 |
| ·血管新生因子载体材料 | 第20-22页 |
| ·PLGA | 第20-21页 |
| ·血管新生因子在载体材料中的稳定性 | 第21-22页 |
| 2. 课题的提出 | 第22-23页 |
| 第二章 生物可降解性支架的制备及体外研究 | 第23-33页 |
| ·引言 | 第23页 |
| ·材料与方法 | 第23-26页 |
| ·试剂与仪器 | 第23页 |
| ·PLGA支架的制备 | 第23-24页 |
| ·Mg-PLGA支架的制备 | 第24页 |
| ·体外释放研究 | 第24-25页 |
| ·支架体外降解性能测试 | 第25页 |
| ·光谱法研究Mg~(2+)对药物活性影响 | 第25-26页 |
| ·紫外光谱 | 第25页 |
| ·荧光光谱 | 第25页 |
| ·圆二色谱 | 第25-26页 |
| ·结果与讨论 | 第26-32页 |
| ·支架的形貌 | 第26页 |
| ·支架中药物的体外释放行为 | 第26-27页 |
| ·支架体外降解行为研究 | 第27-29页 |
| ·光谱学评价 | 第29-32页 |
| ·本章小结 | 第32-33页 |
| 第三章 载生长因子的生物可降解性支架与细胞作用研究 | 第33-40页 |
| ·引言 | 第33页 |
| · | 第33-35页 |
| ·试剂与仪器 | 第33页 |
| ·载生长因子的生物可降解性PLGA双层支架的制备 | 第33页 |
| ·载生长因子的生物可降解性Mg-PLGA支架的制备 | 第33-34页 |
| ·支架材料对细胞的毒性检测(间接毒性) | 第34页 |
| ·载药支架对细胞增殖的影响 | 第34页 |
| ·载药支架对细胞迁移的影响 | 第34-35页 |
| ·结果与讨论 | 第35-39页 |
| ·支架对细胞的间接毒性 | 第35-37页 |
| ·支架对细胞增殖的影响 | 第37-38页 |
| ·支架对细胞迁移的影响 | 第38-39页 |
| ·本章小结 | 第39-40页 |
| 第四章 载生长因子的生物可降解性支架下肢缺血血运重建实验研究 | 第40-49页 |
| ·引言 | 第40页 |
| ·材料与方法 | 第40-42页 |
| ·试剂与仪器 | 第40页 |
| ·载生长因子的生物可降解性PLGA双层支架的制备 | 第40页 |
| ·载生长因子的生物可降解性Mg-PLGA支架的制备 | 第40-41页 |
| ·大鼠急性下肢缺血模型的建立与支架的置入 | 第41页 |
| ·激光多普勒血流成像研究 | 第41页 |
| ·大鼠下肢骨骼肌血管新生研究 | 第41-42页 |
| ·支架体内降解情况研究 | 第42页 |
| ·支架体内代谢情况研究 | 第42页 |
| ·支架的生物安全性评价 | 第42页 |
| ·结果与讨论 | 第42-48页 |
| ·支架对下肢缺血大鼠血管密度的作用 | 第42-44页 |
| ·支架对下肢缺血大鼠下肢血流的影响 | 第44-45页 |
| ·支架体内降解情况 | 第45-46页 |
| ·支架体内代谢情况 | 第46-47页 |
| ·支架体内安全性评价 | 第47-48页 |
| ·本章小结 | 第48-49页 |
| 第五章 载葛根素的生物可降解性支架下肢缺血血运重建实验研究 | 第49-59页 |
| ·引言 | 第49页 |
| ·材料与方法 | 第49-53页 |
| ·试剂与仪器 | 第49-50页 |
| ·载葛根素的生物可降解性PLGA双层支架的制备 | 第50页 |
| ·支架中葛根素的体外释放性能研究 | 第50页 |
| ·大鼠急性下肢缺血模型的建立 | 第50页 |
| ·肌肉打孔与支架置入 | 第50-51页 |
| ·激光多普勒血流成像分析 | 第51页 |
| ·大鼠下肢骨骼肌血管新生研究 | 第51页 |
| ·大鼠下肢骨骼肌组织中VEGF、bFGF、eNOS、PDGF mRNA测定 | 第51-52页 |
| ·骨骼肌组织中提取RNA、逆转录cDNA | 第51-52页 |
| ·目的基因PCR及RQ-PCR | 第52页 |
| ·支架的生物安全性评价 | 第52-53页 |
| ·结果与讨论 | 第53-58页 |
| ·葛根素支架体外释放性能研究 | 第53页 |
| ·新生血管密度量化分析 | 第53-54页 |
| ·激光多普勒下肢血流检测 | 第54-55页 |
| ·缺血骨骼肌eNOS,PDGF-β,VEGF,bFGFmRNA表达 | 第55-57页 |
| ·支架生物安全性分析 | 第57-58页 |
| ·本章小结 | 第58-59页 |
| 第六章 葛根素在动物创伤中的应用 | 第59-65页 |
| ·引言 | 第59-60页 |
| ·材料与方法 | 第60-61页 |
| ·试剂与仪器 | 第60页 |
| ·大鼠皮肤创伤模型的建立 | 第60页 |
| ·动物分组及给药 | 第60页 |
| ·创面愈合情况的评价 | 第60-61页 |
| ·创面修复组织化学检查 | 第61页 |
| ·结果与讨论 | 第61-64页 |
| ·创伤状况肉眼观察 | 第61-62页 |
| ·创面愈合率的比较 | 第62-63页 |
| ·创伤组织病理学观察 | 第63-64页 |
| ·本章小结 | 第64-65页 |
| 第七章 结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-81页 |
| 第二部分 | 第81-102页 |
| 中文摘要 | 第81-82页 |
| Abstract | 第82-83页 |
| 第一章 前言 | 第83-87页 |
| 第二章 材料与方法 | 第87-90页 |
| 1. 试剂与仪器 | 第87页 |
| 2. HPG的合成与表征 | 第87页 |
| 3. 聚合物HPG-PLGA的制备与表征 | 第87-88页 |
| 4. 包载EM的纳米粒子的制备与表征 | 第88页 |
| 5. OX26偶联的EM-HPG-PLGA纳米粒子(0X26-EM-HPG-PLGA)的制备与表征 | 第88页 |
| 6. 药物体外释放 | 第88页 |
| 7. 流式细胞术检测BMECs对FITC标记的0X26—HPG—PLGA纳米粒子的摄取 | 第88-89页 |
| 8. 包载EM的纳米粒子脑内镇痛作用研究 | 第89页 |
| ·慢性坐骨神经结扎大鼠模型的制备 | 第89页 |
| ·机械缩足痛阈值的测量 | 第89页 |
| ·分组和给药 | 第89页 |
| 9. 统计学处理 | 第89-90页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第90-98页 |
| 1. HPG的合成与表征 | 第90页 |
| 2. 聚合物HPG-PLGA的制备与表征 | 第90-92页 |
| 3. 表面元素分析 | 第92-93页 |
| 4. 纳米粒子的表征与药物体外释放行为 | 第93-95页 |
| 5. BMECs对FITC标记的0X26—HPG—PLGA NPs的摄取 | 第95-96页 |
| 6. 包载EM的纳米粒子脑内镇痛作用 | 第96-98页 |
| 第四章 结论 | 第98-99页 |
| 参考文献 | 第99-102页 |
| 作者简历 | 第102页 |
| 论文发表情况 | 第102-103页 |
| 致谢 | 第103页 |
