| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 英文缩写词 | 第8-9页 |
| 目录 | 第9-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-32页 |
| ·隐花色素的介绍 | 第12页 |
| ·隐花色素的历史背景 | 第12-13页 |
| ·隐花色素的功能 | 第13-21页 |
| ·隐花色素的表达与亚细胞定位 | 第13-14页 |
| ·去黄化的光照刺激 | 第14-16页 |
| ·下胚轴伸长的蓝光抑制 | 第14-15页 |
| ·蓝光刺激子叶伸长 | 第15页 |
| ·蓝光促使叶绿体发育 | 第15-16页 |
| ·开花时间的光周期调节 | 第16-17页 |
| ·光调节植物生物钟 | 第17-18页 |
| ·光照刺激对于保卫细胞的发育与叶片气孔开度的影响 | 第18页 |
| ·根发育的光照调节 | 第18-19页 |
| ·其他功能 | 第19-21页 |
| ·磁场感应 | 第19页 |
| ·细胞程序性死亡（PCD） | 第19-20页 |
| ·向光性 | 第20页 |
| ·向地性 | 第20-21页 |
| ·有没有不依赖 CRY 的蓝光响应 | 第21页 |
| ·隐花色素的结构 | 第21-25页 |
| ·PHR 结构域 | 第22-23页 |
| ·CCR | 第23-24页 |
| ·光诱导性构象变化 | 第24-25页 |
| ·隐花色素光生物化学 | 第25-26页 |
| ·蓝光依赖的隐花色素磷酸化 | 第25-26页 |
| ·蓝光响应的 CRY2 蛋白降解 | 第26页 |
| ·CRY 相互作用蛋白与隐花色素的信号传导 | 第26-32页 |
| ·光敏色素 | 第27-28页 |
| ·含有 LOV 结构域的 F-box 蛋白 ZTL | 第28页 |
| ·E3 连接酶 COP1 | 第28-29页 |
| ·CRY 相互作用 bHLH 蛋白 | 第29-31页 |
| ·植物蓝光受体互作蛋白的筛选 | 第31-32页 |
| 第二章 植物蓝光受体 CRY2 与 SPA1 蛋白蓝光依赖的相互作用 | 第32-47页 |
| ·材料与方法 | 第32-36页 |
| ·实验材料 | 第32-33页 |
| ·酵母菌株 | 第32页 |
| ·酵母双杂交载体 | 第32页 |
| ·光源 | 第32-33页 |
| ·主要试剂及培养基配置 | 第33页 |
| ·实验方法 | 第33-36页 |
| ·RNA 的提取 | 第33页 |
| ·PCR 扩增目的片段或启动子 | 第33-34页 |
| ·酵母双杂交载体构建及转化 | 第34-35页 |
| ·DNA 目的片段与载体连接反应 | 第35页 |
| ·转化 DH5α大肠杆菌感受态 | 第35页 |
| ·酵母双杂交载体转化 | 第35-36页 |
| ·β-半乳糖苷酶活性检测 | 第36页 |
| ·结果与讨论 | 第36-47页 |
| ·拟南芥 SPA1 蛋白与 CRY2 蛋白在酵母细胞中蓝关依赖的相互作用 | 第36-42页 |
| ·拟南芥 SPA1 蛋白与 CRY2 在植物细胞中蓝光依赖的相互作用 | 第42-44页 |
| ·拟南芥 SPA1 蛋白与 CRY2 蛋白在蓝光下共定位于植物细胞中 | 第44-45页 |
| ·蓝光或红光光源纯度的测定 | 第45-47页 |
| 第三章 植物蓝光受体 CRY1 与 SPA1 蛋白蓝光依赖的相互作用 | 第47-53页 |
| ·材料与方法 | 第47页 |
| ·实验材料 | 第47页 |
| ·实验方法 | 第47页 |
| ·结果与讨论 | 第47-53页 |
| ·拟南芥 SPA1 蛋白与 CRY1 在酵母细胞中蓝关依赖的相互作用 | 第47-50页 |
| ·拟南芥 SPA1 蛋白与 CRY1 在植物细胞中蓝光依赖的相互作用 | 第50-51页 |
| ·拟南芥 SPA1 蛋白与 CRY2 蛋白在蓝光下共定位于植物细胞中 | 第51-53页 |
| 第四章 植物蓝光受体 CRY1、CRY2 与 SPA1 蛋白相互作用的结构域 | 第53-68页 |
| ·材料与方法 | 第53-54页 |
| ·实验材料 | 第53-54页 |
| ·酵母菌株 | 第53页 |
| ·酵母双杂交载体 | 第53页 |
| ·植物材料 | 第53-54页 |
| ·实验方法 | 第54页 |
| ·拟南芥的种植 | 第54页 |
| ·农杆菌转化 | 第54页 |
| ·拟南芥的转化 | 第54页 |
| ·结果与讨论 | 第54-68页 |
| ·拟南芥 SPA1 蛋白与 CRY2 相互作用的结构域 | 第54-61页 |
| ·拟南芥 SPA1 蛋白与 CRY1 相互作用的结构域 | 第61-63页 |
| ·拟南芥 CRY1 蛋白与 CRY2 蛋白通过不同的结构域与 SPA1 相互作用 | 第63-68页 |
| 第五章 SPA1 蛋白在蓝光信号传导途径中的作用 | 第68-82页 |
| ·材料与方法 | 第68-70页 |
| ·实验材料 | 第68-69页 |
| ·植物材料 | 第68页 |
| ·主要试剂 | 第68-69页 |
| ·实验方法 | 第69-70页 |
| ·RNA 的提取 | 第69页 |
| ·酵母转化 | 第69页 |
| ·荧光实时定量 PCR(Q-PCR) | 第69-70页 |
| ·结果与讨论 | 第70-82页 |
| ·SPA1 蛋白参与 CRY2 蛋白调节植物开花 | 第70-71页 |
| ·SPA1 蛋白与 CRY2 蛋白调节 CO 蛋白降解 | 第71-73页 |
| ·SPA1 蛋白与 CRY2 蛋白调节 FT 基因的表达 | 第73-74页 |
| ·SPA1 蛋白参与 CRY1 蛋白调节植物下胚轴的伸长 | 第74-75页 |
| ·SPA1 蛋白与 CRY2 蛋白调节 HY5 蛋白降解 | 第75-77页 |
| ·SPA1 蛋白与 CRY2 蛋白调节 CHS 基因的表达 | 第77-78页 |
| ·SPA4 蛋白与 CRY1 蛋白蓝光依赖的相互作用 | 第78-82页 |
| 第六章 蓝光受体 CRY1、CRY2 调节 SPA1-COP1 蛋白复合体的分子机制 | 第82-96页 |
| ·材料与方法 | 第82-83页 |
| ·实验材料及主要试剂 | 第82页 |
| ·主要试剂 | 第82页 |
| ·实验方法 | 第82-83页 |
| ·酵母三杂交实验 | 第82页 |
| ·其他实验方法 | 第82-83页 |
| ·结果与讨论 | 第83-96页 |
| ·蓝光下 CRY1 蛋白在酵母细胞中抑制 SPA1-COP1 蛋白复合体的功能 | 第83-86页 |
| ·蓝光下 CRY1 蛋白在植物细胞中抑制 SPA1-COP1 蛋白复合体的功能 | 第86-88页 |
| ·蓝光下 CRY2 蛋白在酵母细胞中抑制 SPA1-COP1 蛋白复合体的功能 | 第88-91页 |
| ·蓝光下 CRY2 蛋白在植物细胞中抑制 SPA1-COP1 蛋白复合体的功能 | 第91-93页 |
| ·蓝光下 CRY1、CRY2 蛋白抑制 SPA1-COP1 蛋白复合体不同的分子机制 | 第93-96页 |
| 结论 | 第96-98页 |
| 参考文献 | 第98-123页 |
| 附录 A 攻读学位期间所发表和完成的学术论文目录 | 第123-124页 |
| 致谢 | 第124页 |
