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GUS基因在优化海带表达系统中的应用

中文摘要第1-6页
英文摘要第6-8页
文献综述第8-16页
 一. 转化的必要条件第8-9页
 二. 莱茵衣藻的转化第9-11页
 三. 硅藻及其它真核单细胞藻的转化第11-12页
 四. 大型藻的转化第12-13页
 五. 海带基因工程研究第13-15页
 六. 本文研究内容和目标第15-16页
第一章: 海带GUS本底的研究第16-21页
 1. 材料与方法第16-18页
  1.1 海带材料第16页
  1.2 培养基第16页
  1.3 GUS本底的组织化学检测第16-17页
  1.4 GUS活性的荧光测定第17-18页
   1.4.1 粗酶液的提取第17页
   1.4.2 荧光强度的检测第17-18页
   1.4.3 蛋白质含量的测定第18页
 2. 结果与讨论第18-21页
  2.1 实验结果第18-19页
   2.1.1 各种海带材料GUS本底的组织化学检测第18页
   2.1.2 各种海带材料的GUS本底定量研究第18-19页
  2.2 讨论第19-21页
   2.2.1 野生海带假阳性本底的排除第19页
   2.2.2 荧光分析法检测GUS活性的空白设置第19页
   2.2.3 GUS本底与海带发育阶段的相关性第19-21页
第二章: 海带基因工程适用高效启动子的筛选第21-26页
 1. 材料第21-22页
  1.1 菌株第21页
  1.2 海带材料第21页
  1.3 细菌培养基第21页
  1.4 溶液配置第21-22页
 2. 方法第22-24页
  2.1 转化供体质粒的制备第22-23页
   2.1.1 供体质粒第22页
   2.1.2 大肠杆菌感受态的制备第22页
   2.1.3 大肠杆菌的转化第22-23页
   2.1.4 质粒DNA的提取第23页
   2.1.5质粒的电泳鉴定第23页
  2.2 海带的基因枪转化第23-24页
   2.2.1 基因枪子弹的制作第23-24页
   2.2.2 基因枪转化第24页
  2.3 GUS活性的荧光分析检测第24页
 3. 结果与讨论第24-26页
  3.1 四种启动子驱动GUS基因在海带中瞬间表达的结果第24-25页
  3.2 高效启动子的选择第25-26页
第三章: GUS基因在孤雌生殖海带中的稳定表达第26-33页
 1. 材料第26页
 2. 方法第26-29页
  2.1 质粒的制备第26页
  2.2 受体的制备第26页
  2.3 海带雌配子体的转化第26页
  2.4 GUS的组织化学染色法检测第26-27页
  2.5 PCR检测转基因海带中的GUS基因第27-29页
   2.5.1 海带总DNA的提取第27页
   2.5.2 PCR引物的设计第27-28页
   2.5.3 PCR检测第28-29页
 3. 结果第29-30页
  3.1 GUS的组织化学染色法检测第29-30页
   3.1.1 GUS基因在海带雌配子体中的瞬间表达第29页
   3.1.2 GUS基因在孤雌生殖海带中的稳定表达第29-30页
   3.1.3 FCP启动子被海带转录系统识别的验证第30页
  3.2 转基因海带的PCR检测第30页
 4. 讨论第30-33页
  4.1 转化率第30-31页
  4.2 表达效率第31-33页
第四章: 孤雌生殖海带对草丁膦的敏感性研究第33-38页
 1. 材料和方法第33-34页
  1.1 孤雌生殖海带及其培养方法第33页
  1.2 孤雌生殖海带对草丁膦的敏感性实验第33页
  1.3 半致死剂量(LD_(50))及95%可信限的计算第33-34页
  1.4 不同长度孤雌生殖海带LD_(50)差异的显著性检验第34页
 2. 实验结果第34-36页
  2.1 孤雌生殖海带对不同浓度草丁膦的毒性反应现象第34-35页
  2.2 孤雌生殖海带对草丁膦敏感性的统计分析第35-36页
 3. 讨论与结语第36-38页
参考文献第38-46页
致谢第46-47页

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