英文缩写字表 | 第1-6页 |
中文摘要 | 第6-9页 |
英文摘要 | 第9-13页 |
前言 | 第13-17页 |
第一章 姜黄素对慢性心理应激致大鼠海马损伤的神经保护作用(整体部分) | 第17-52页 |
第一节 材料与方法 | 第17-34页 |
1. 实验材料 | 第17-18页 |
·药品与试剂 | 第17页 |
·主要实验仪器 | 第17-18页 |
·实验动物 | 第18页 |
2. 实验方法 | 第18-34页 |
·慢性心理应激模型 | 第18页 |
·药物干预及应激模型 | 第18-19页 |
·体重和糖水偏嗜度试验 | 第19页 |
·旷场试验 | 第19页 |
·M orris 水迷宫实验 | 第19-20页 |
·海马齿状回LTP 测定 | 第20-22页 |
·血清糖皮质激素含量测定 | 第22页 |
·海马组织单胺类递质含量测定 | 第22-23页 |
·Western blot 检测海马MAP-2 和BDNF 蛋白的表达 | 第23-28页 |
·实时荧光定量PCR(real-time PCR)检测海马MAP-2 和BDNFmRNA 的表达 | 第28-31页 |
·免疫组织化学观察海马组织MAP-2 和BDNF 的变化 | 第31-34页 |
·HE 染色观察各干预组海马组织形态 | 第34页 |
第二节 统计分析 | 第34-35页 |
第三节 实验结果 | 第35-52页 |
一、慢性心理应激对大鼠海马的损伤作用 | 第35-37页 |
二、姜黄素在慢性应激致海马损伤神经保护作用及机制 | 第37-52页 |
第二章 姜黄素对海马神经元的保护作用(细胞部分) | 第52-64页 |
第一节 材料和方法 | 第52-58页 |
1. 实验材料 | 第52-53页 |
·药品与试剂 | 第52页 |
·主要实验仪器设备 | 第52-53页 |
·动物 | 第53页 |
2. 海马神经元体外原代培养 | 第53-57页 |
·主要试剂配制 | 第53-55页 |
·细胞种植 | 第55页 |
·高糖有血清培养 | 第55页 |
·阿糖胞苷抑制 | 第55页 |
·低糖无血清培养 | 第55-56页 |
·添加影响因素 | 第56-57页 |
3. 指标检测 | 第57-58页 |
·大鼠大脑海马形态学观察 | 第57页 |
·大鼠大脑海马神经元纯度鉴定 | 第57页 |
·神经细胞存活率测定 | 第57页 |
·细胞免疫荧光染色 | 第57-58页 |
·细胞总蛋白的提取和浓度测定 | 第58页 |
·WB 测定蛋白表达 | 第58页 |
第二节 数据处理 | 第58-59页 |
第三节 实验结果 | 第59-64页 |
第三章 分析讨论 | 第64-76页 |
第四章 结论 | 第76-77页 |
参考文献 | 第77-86页 |
文献综述 | 第86-103页 |
参考文献 | 第95-103页 |
发表文章 | 第103-109页 |
个人简介 | 第109-110页 |
致谢 | 第110页 |