MPTP损伤的小鼠慢性PD模型的制作与评价
| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-17页 |
| ·帕金森病简介 | 第11-12页 |
| ·帕金森病的可能发病原因 | 第12页 |
| ·多巴胺的重要功能 | 第12-13页 |
| ·帕金森病的发生与线粒体能量代谢的联系 | 第13-14页 |
| ·帕金森病动物模型的研究进展 | 第14-15页 |
| ·本研究的主要内容及创新 | 第15页 |
| ·本论文的组织结构 | 第15-17页 |
| 第二章 帕金森病动物模型相关知识介绍 | 第17-20页 |
| ·MPTP动物模型的起源 | 第17页 |
| ·MPTP的代谢途径和DA神经元的特异性损伤 | 第17-20页 |
| 第三章 MPTP模型的制作与评价 | 第20-44页 |
| ·材料和方法 | 第20-23页 |
| ·实验动物及分组 | 第20页 |
| ·实验动物 | 第20页 |
| ·实验分组 | 第20页 |
| ·仪器和耗材 | 第20-21页 |
| ·试剂和溶液 | 第21-22页 |
| ·模型制作 | 第22-23页 |
| ·工作液配制 | 第22页 |
| ·PD模型制作方案 | 第22-23页 |
| ·模型评价指标 | 第23-28页 |
| ·行为学检验 | 第23页 |
| ·组织病理学检查 | 第23-26页 |
| ·MTT组织活性检测 | 第23-24页 |
| ·Nissl 染色 | 第24-25页 |
| ·TH免疫组织化学 | 第25-26页 |
| ·神经生化检验 | 第26-27页 |
| ·小鼠脑纹状体的取样 | 第26页 |
| ·样品中多巴胺的制备 | 第26页 |
| ·样品中多巴胺的测定(HPLC-EC法) | 第26-27页 |
| ·图像分析方法 | 第27-28页 |
| ·MTT检验 | 第27-28页 |
| ·Nissl染色 | 第28页 |
| ·TH免疫组织化学 | 第28页 |
| ·统计学处理 | 第28页 |
| ·实验结果与分析 | 第28-41页 |
| ·行为学检验结果 | 第28-31页 |
| ·开野观察 | 第28页 |
| ·小鼠体重测试结果 | 第28-29页 |
| ·旋转杆测试(rotarod)结果 | 第29-31页 |
| ·组织病理学检查结果 | 第31-37页 |
| ·MTT活性检测结果 | 第31-33页 |
| ·Nissl染色结果 | 第33-36页 |
| ·TH免疫组化染色结果 | 第36-37页 |
| ·神经生化检验结果 | 第37-41页 |
| ·讨论 | 第41-44页 |
| ·行为学实验 | 第41-42页 |
| ·组织病理学检验 | 第42页 |
| ·神经生化检验 | 第42-44页 |
| 第四章：结论和展望 | 第44-47页 |
| ·本论文研究总结 | 第44-45页 |
| ·前景展望 | 第45-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-54页 |
| 在学期间的研究成果 | 第54-55页 |
