| 中文摘要 | 第1-6页 |
| 英文摘要 | 第6-11页 |
| 缩略词表 | 第11-13页 |
| 1 绪论 | 第13-21页 |
| ·乙烯信号转导途径 | 第13-16页 |
| ·乙烯与果实成熟 | 第16-17页 |
| ·本论文研究的目的和研究内容 | 第17-20页 |
| ·本论文研究的目的 | 第17-18页 |
| ·本论文研究的主要内容 | 第18-20页 |
| ·本论文研究的创新点 | 第20-21页 |
| 2 番茄LeEIN2 基因的克隆 | 第21-42页 |
| ·材料与试剂 | 第21-23页 |
| ·植物材料、质粒、菌株试剂 | 第21页 |
| ·主要仪器设备 | 第21-22页 |
| ·常用试剂配制 | 第22-23页 |
| ·实验方法 | 第23-24页 |
| ·番茄果实总RNA 提取 | 第23页 |
| ·番茄果实基因组DNA 提取 | 第23-24页 |
| ·核酸质量及浓度测定 | 第24页 |
| ·番茄LeEIN2 基因全长cDNA 的克隆 | 第24-32页 |
| ·番茄LeEIN2 cDNA 片段的克隆 | 第24-28页 |
| ·LeEIN2 3’端cDNA 序列扩增 | 第28-29页 |
| ·LeEIN2 5’端cDNA 序列扩增 | 第29-32页 |
| ·番茄LeEIN2 完整基因的扩增 | 第32-34页 |
| ·番茄LeEIN2 部分基因组序列的扩增 | 第32页 |
| ·Inverse PCR 获得番茄LeEIN2 基因组5’端序列 | 第32-34页 |
| ·结果与分析 | 第34-40页 |
| ·讨论 | 第40-42页 |
| 3 番茄LeEIN2 超表达载体的构建、转化与鉴定 | 第42-53页 |
| ·材料与试剂 | 第42-45页 |
| ·植物材料、质粒、菌株 | 第42页 |
| ·主要仪器设备 | 第42页 |
| ·主要化学试剂和试剂盒 | 第42-43页 |
| ·实验所用试剂的配制 | 第43-45页 |
| ·实验方法 | 第45-47页 |
| ·质粒DNA 的制备 | 第45页 |
| ·质粒的酶切及连接 | 第45-46页 |
| ·载体构建 | 第46页 |
| ·番茄的遗传转化 | 第46-47页 |
| ·转基因植物的鉴定 | 第47-49页 |
| ·转基因植物基因组DNA 的制备 | 第47页 |
| ·Southern 杂交 | 第47-49页 |
| ·结果与分析 | 第49-51页 |
| ·番茄LeEIN2 部分基因超表达载体的构建 | 第49-50页 |
| ·转基因植株Southern 鉴定 | 第50-51页 |
| ·讨论 | 第51-53页 |
| 4 番茄LeEIN2 基因表达模式和功能研究 | 第53-60页 |
| ·材料与试剂 | 第53-54页 |
| ·植物材料及处理 | 第53页 |
| ·主要仪器设备 | 第53-54页 |
| ·主要化学试剂及试剂盒 | 第54页 |
| ·常用试剂配制 | 第54页 |
| ·方法 | 第54-55页 |
| ·总RNA 的制备 | 第54页 |
| ·Northern 杂交 | 第54-55页 |
| ·结果与分析 | 第55-58页 |
| ·番茄LeEIN2 基因在不同发育时期叶片和果实中的表达模式 | 第55-56页 |
| ·外源乙烯对番茄LeEIN2 基因表达的影响 | 第56页 |
| ·番茄LeEIN2 基因沉默果实的表型分析 | 第56-57页 |
| ·目的基因LeEIN2 的Northern 检测 | 第57页 |
| ·LeEIN2 基因沉默果实PG 的检测 | 第57-58页 |
| ·讨论 | 第58-60页 |
| 5 结论与展望 | 第60-61页 |
| ·主要结论 | 第60页 |
| ·后续研究工作的展望 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-67页 |
| 附: | 第67-68页 |
| 1.作者在攻读硕士学位期间发表的论文目录 | 第67页 |
| 2.番茄 LeEIN2 基因在 GenBank 注册的基因号 | 第67-68页 |
| 独创性声明 | 第68页 |
| 学位论文版权使用授权书 | 第68页 |
