| 摘要 | 第1-3页 |
| ABSTRACT | 第3-6页 |
| 引言 | 第6-7页 |
| 一、材料与方法 | 第7-12页 |
| ·材料 | 第7-9页 |
| ·实验动物 | 第7页 |
| ·药品与试剂 | 第7页 |
| ·主要实验设备 | 第7-8页 |
| ·主要试剂的配制 | 第8-9页 |
| ·方法 | 第9-12页 |
| ·培养皿的处理 | 第9页 |
| ·海马神经元的培养 | 第9-10页 |
| ·尼氏染色 | 第10页 |
| ·分组及给药 | 第10页 |
| ·缺氧模型的制备 | 第10页 |
| ·检测分析 | 第10-11页 |
| ·统计学处理 | 第11-12页 |
| 二、结果 | 第12-15页 |
| ·细胞存活率的计算 | 第12页 |
| ·尼氏染色结果 | 第12页 |
| ·姬姆萨染色 | 第12页 |
| ·Hoechst染色 | 第12页 |
| ·海马神经元内[C2a+i]浓度 | 第12-13页 |
| ·扇贝多肽对缺氧所致的海马神经元抗氧化酶活性及MDA含量的影响 | 第13-15页 |
| 三、讨论 | 第15-18页 |
| ·大鼠海马神经元的形态和分布 | 第15页 |
| ·目前常用培养细胞缺氧方法有两种 | 第15页 |
| ·用台盼蓝染细胞,活细胞拒染,不是活细胞可摄取染料 | 第15-16页 |
| ·尼氏体(Nissl bodies)常也被称为嗜色小体或虎斑 | 第16页 |
| ·Hoechst染色 | 第16页 |
| ·本实验制备的神经细胞悬液以 Fura-/2AM为荧光指示剂测定神经细胞静息 [Ca~(2+)]i值与文献报道基本一致 | 第16-17页 |
| ·正常情况下体内产生少量自由基属生理范围,可被抗氧化防御系统清除,使自由基的产生及清除处于动态平衡状态 | 第17页 |
| ·传统观点一直认为脑缺氧缺血后神经细胞死亡形成只有坏死,但近年来越来 越多证据表明,迟发性细胞死亡主要系凋亡所致 | 第17-18页 |
| 结论 | 第18-19页 |
| 附图 | 第19-24页 |
| 参考文献 | 第24-26页 |
| 致谢 | 第26-27页 |
| 文献综述 | 第27-50页 |
