摘要 | 第1-5页 |
ABSTRACT | 第5-9页 |
第一章 文献综述 | 第9-21页 |
·黄瓜组织培养研究进展 | 第9-12页 |
·内部因素 | 第9-10页 |
·外部因素 | 第10-12页 |
·黄瓜遗传转化研究进展 | 第12-16页 |
·农杆菌介导的转化机理 | 第12-13页 |
·根癌农杆菌介导的转化方法 | 第13-15页 |
·影响农杆菌遗传转化率的主要因素 | 第15页 |
·农杆菌遗传转化存在问题 | 第15-16页 |
·SOD 基因转化 | 第16-19页 |
·超氧化物歧化酶的特性 | 第16-17页 |
·SOD 与植物的抗逆性 | 第17页 |
·SOD 基因在抗逆基因工程中的应用 | 第17-19页 |
·本试验研究的目的和意义 | 第19页 |
·本试验研究得主要内容及其预期的目标 | 第19-21页 |
·主要内容 | 第19-20页 |
·预期的目标 | 第20-21页 |
第二章 黄瓜高频再生体系的优化研究 | 第21-31页 |
·试验材料与方法 | 第21-23页 |
·材料 | 第21页 |
·方法 | 第21-23页 |
·再生频率与每块外植体再生芽数的计算 | 第23页 |
·结果与分析 | 第23-29页 |
·TDZ、6-BA 和IBA 对黄瓜子叶节再生的影响 | 第23-24页 |
·外植体苗态对黄瓜子叶节再生的影响 | 第24-26页 |
·外植体的切割与接种方式对黄瓜子叶节再生的影响 | 第26-27页 |
·基因型对黄瓜子叶节再生的影响 | 第27页 |
·AgNO_3浓度对黄瓜子叶再生的影响 | 第27页 |
·光培养和暗培养对子叶节再生的影响 | 第27页 |
·6-BA 和 KT 对黄瓜幼芽伸长的影响 | 第27-29页 |
·生根培养基的筛选 | 第29页 |
·讨论 | 第29-31页 |
第三章 黄瓜遗传转化体系的研究 | 第31-44页 |
·试验材料和方法 | 第31-34页 |
·试验材料 | 第31页 |
·培养基种类 | 第31页 |
·试剂的配置 | 第31-32页 |
·黄瓜卡那霉素(Kan)和抑菌头孢霉素(Cef)的敏感性试验 | 第32页 |
·农杆菌菌株和质粒 | 第32页 |
·影响黄瓜遗传转化的主要因素试验 | 第32-34页 |
·结果与分析 | 第34-40页 |
·Kan 的敏感性浓度筛选 | 第34-35页 |
·Cef 抑菌剂浓度对抑菌效果和芽分化的影响 | 第35-36页 |
·预培养时间对黄瓜子叶节遗传转化的影响 | 第36页 |
·农杆菌浓度对黄瓜子叶节遗传转化的影响 | 第36-37页 |
·感菌时间对黄瓜子叶节遗传转化的影响 | 第37页 |
·共培养时间对黄瓜子叶节遗传转化的影响 | 第37-38页 |
·光照和黑暗对黄瓜遗传转化的影响 | 第38页 |
·基因型对黄瓜遗传转化的影响 | 第38-39页 |
·外植体苗态对黄瓜遗传转化的影响 | 第39页 |
·子叶节的切割方式和接种方式对黄瓜遗传转化的影响 | 第39-40页 |
·硝酸银(AgN03)和乙酰丁香酮(AS)对黄瓜遗传转化的影响 | 第40页 |
·讨论 | 第40-44页 |
第四章 黄瓜转基因植株的检测 | 第44-49页 |
·材料 | 第44页 |
·方法 | 第44-46页 |
·GUS 染色 | 第44页 |
·PCR 检测 | 第44-46页 |
·结果与分析 | 第46-47页 |
·GUS 检测结果 | 第46页 |
·PCR 检测结果 | 第46-47页 |
·讨论 | 第47-49页 |
·GUS 检测 | 第47页 |
·PCR 检测 | 第47-49页 |
第五章 结论 | 第49-50页 |
·黄瓜再生体系的优化 | 第49页 |
·黄瓜转化体系的建立 | 第49页 |
·黄瓜转基因植株的 GUS 组织化学染色和 PCR 检测鉴定 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-55页 |
致谢 | 第55-56页 |
个人简介 | 第56-57页 |
图版 | 第57-59页 |