| 致谢 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 第一章 前言 | 第10-27页 |
| 1 | 第10-19页 |
| ·光合作用过程概述 | 第10-11页 |
| ·光合细菌分类 | 第11页 |
| ·反应中心复合体和电子传递途径 | 第11-13页 |
| ·丝状不放氧光合生物的研究进展 | 第13-15页 |
| ·光合细菌Chloroyflexus aurantiacus研究进展 | 第15-17页 |
| ·光合细菌Roseiflexus castenholzii研究进展 | 第17-19页 |
| 2 Auracyanins(金色蓝素)研究进展 | 第19-25页 |
| ·Chloroflexus aurantiacus中的Auracyanin研究状况 | 第19-22页 |
| ·Auracyanin B的结构特征 | 第21-22页 |
| ·Auracyanin B的N端结构的功能假设 | 第22页 |
| ·Auracyanin B的光谱特征 | 第22页 |
| ·Auracyanin蛋白质的氧化还原特性 | 第22页 |
| ·Auracyanin可能的功能 | 第22-23页 |
| ·Auracyanin的进化意义 | 第23页 |
| ·Roseiflexus castenholzii中的Auracyanin研究状况 | 第23-25页 |
| ·Cupredoxins蛋白质研究进展 | 第25页 |
| 3 FAPs的光合作用电子传递链可能的工作原理 | 第25-26页 |
| 4 选题背景和意义 | 第26-27页 |
| 第二章 可溶性Auracyanin的克隆与表达 | 第27-46页 |
| ·材料与方法 | 第27-37页 |
| ·菌株和质粒 | 第27页 |
| ·培养基 | 第27-28页 |
| ·主要生化和分子生物学试剂 | 第28页 |
| ·主要仪器和设备 | 第28-29页 |
| ·引物设计 | 第29页 |
| ·Roseiflexus castenholzii DSM 13941细菌总DNA的提取 | 第29-30页 |
| ·PCR反应 | 第30页 |
| ·质粒pPAL7的提取 | 第30-31页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第31页 |
| ·割胶回收DNA片段 | 第31-32页 |
| ·重组克隆质粒pEASY-T1-bcd2的构建 | 第32-34页 |
| ·重组表达质粒pPAL7-bcd2的构建 | 第34-35页 |
| ·质粒pEASY-T1-bcd2测序 | 第35页 |
| ·BCD 2基因在大肠杆菌中的诱导表达 | 第35页 |
| ·异源表达的Auracyanin可溶区的蛋白质含量测定 | 第35-36页 |
| ·异源表达的Auracyanin可溶区的纯化 | 第36页 |
| ·Tricine-SDS-PAGE分析 | 第36-37页 |
| ·结果与分析 | 第37-45页 |
| ·Roseiflexus castenholzii DSM 13941总DNA的提取 | 第37页 |
| ·PCR克隆的可溶性Auracyanin基因片段 | 第37-38页 |
| ·pEASY-T1-bcd2测序结果 | 第38-40页 |
| ·重组质粒pEASY-T1-bcd2和pPAL7-bcd2的构建 | 第40-41页 |
| ·pPAL7-bcd2测序结果 | 第41-44页 |
| ·Tricine-SDS-PAGE蛋白电泳分析 | 第44-45页 |
| ·多克隆抗体的制备 | 第45页 |
| ·本章小结 | 第45-46页 |
| 第三章 全长Auracyanin的克隆与表达 | 第46-57页 |
| ·材料与方法 | 第46-50页 |
| ·菌株和质粒 | 第46页 |
| ·培养基 | 第46-47页 |
| ·主要生化和分子生物学试剂 | 第47页 |
| ·主要仪器和设备 | 第47页 |
| ·引物设计 | 第47页 |
| ·液体培养 | 第47页 |
| ·Roseiflexus castenholzii菌总DNA提取 | 第47页 |
| ·PCR克隆Auracyanin的DNA片段 | 第47-48页 |
| ·质粒pPAL7的提取 | 第48页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第48页 |
| ·割胶回收DNA片段 | 第48页 |
| ·重组质粒pPAL7-bcd的构建 | 第48-49页 |
| ·BCD在大肠杆菌BL21(DE3)中表达 | 第49-50页 |
| ·异源表达的Auracyaniti的蛋白质含量测定 | 第50页 |
| ·异源表达的全长Auracyanin的层析纯化 | 第50页 |
| ·Tricine-SDS-PAGE分析 | 第50页 |
| ·Auracyanin的初级结构比较 | 第50页 |
| ·结果与分析 | 第50-56页 |
| ·PCR克隆BCD的基因片段 | 第50-51页 |
| ·重组质粒pPAL7-bcd的构建 | 第51-54页 |
| ·Tricine-SDS-PAGE蛋白电泳分析 | 第54-55页 |
| ·吸收光谱分析 | 第55页 |
| ·进化树分析 | 第55-56页 |
| ·本章小结 | 第56-57页 |
| 第四章 Auracyanin互作蛋白的分离 | 第57-72页 |
| ·材料与方法 | 第57-61页 |
| ·菌株和生长 | 第57页 |
| ·仪器 | 第57-58页 |
| ·试剂的配置 | 第58-59页 |
| ·光合膜蛋白复合物的分离纯化方法 | 第59页 |
| ·高效液相色谱纯化蛋白质 | 第59-61页 |
| ·浓缩样品溶液 | 第61页 |
| ·紫外分光光度计测量过柱后样品的吸收值 | 第61页 |
| ·切胶回收蛋白质 | 第61页 |
| ·MALDI-TOF分析和数据检索 | 第61页 |
| ·结果与分析 | 第61-71页 |
| ·初步分析过程：第一次离子交换柱 | 第61-62页 |
| ·第二次离子交换柱 | 第62-71页 |
| ·本章小结 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-74页 |
