| 英文缩略词表 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-14页 |
| 前言 | 第14-19页 |
| 材料与方法 | 第19-33页 |
| 诊断依据 | 第19-20页 |
| 标本来源 | 第20-21页 |
| 标本处理 | 第21页 |
| 实验流程 | 第21-22页 |
| 标本测定 | 第22-32页 |
| RIA法测定松果体上清液和脑脊液中松果体素的浓度 | 第22-24页 |
| 试剂与仪器 | 第22页 |
| 标准曲线制定 | 第22-23页 |
| 标本测定 | 第23-24页 |
| 方法的评价 | 第24页 |
| 荧光RT-HPLC测定松果体上清液中吲哚类物质 | 第24-26页 |
| 试剂与仪器 | 第24页 |
| 色谱条件 | 第24-25页 |
| 标本测定 | 第25-26页 |
| 方法的评价 | 第26页 |
| 电化学RT-HPLC测定松果体上清液中NE、MHPG、DA、HVA的含量 | 第26-27页 |
| 试剂与仪器 | 第26页 |
| 色谱条件 | 第26-27页 |
| 标本测定 | 第27页 |
| 方法的评价 | 第27页 |
| 定量PCR（Q-PCR） | 第27-31页 |
| 试剂与仪器 | 第27-29页 |
| 总RNA的提取 | 第29-30页 |
| 逆转录PCR（RT-PCR） | 第30-31页 |
| 定量PCR（Q-PCR） | 第31页 |
| Bradford蛋白测定法测定松果体中总蛋白质含量 | 第31-32页 |
| 试剂与仪器 | 第31页 |
| 实验步骤 | 第31-32页 |
| 统计学处理 | 第32-33页 |
| 结果 | 第33-41页 |
| 一般资料 | 第33页 |
| 松果体和CSF中松果体素水平的关系 | 第33-35页 |
| 松果体素合成系统 | 第35-38页 |
| TRP到5-HT通路 | 第35页 |
| 5-HT到松果体素通路 | 第35-37页 |
| 5-HT到5-HIAA通路 | 第37-38页 |
| 松果体素合成的NE调节系统 | 第38-39页 |
| 松果体中DA系统 | 第39页 |
| 定量PCR方法的建立 | 第39页 |
| 选择偏倚因素的相关分析 | 第39-41页 |
| 讨论 | 第41-50页 |
| 松果体与CSF中的松果体素水平高度正相关 | 第41-42页 |
| 松果体素合成通路在AD发病中的变化 | 第42-45页 |
| 松果体中松果体素的合成底物TRP无减少 | 第42页 |
| 松果体中5-HT到松果体素通路的活性下降 | 第42-43页 |
| 松果体中5-HT到5-HIAA通路的活性升高 | 第43-44页 |
| 松果体中5-HT代谢通路间失衡 | 第44-45页 |
| 松果体的NE和MHPG/NE无变化 | 第45-46页 |
| 松果体素昼夜节律的消失是AD的早期表现 | 第46-48页 |
| 松果体中DA、HVA和HVA/DA无变化 | 第48页 |
| 关于病检的人松果体的神经化学研究的谨慎考虑 | 第48-50页 |
| 结论 | 第50页 |
| 研究工作的进一步设想 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-59页 |
| 附录 | 第59-61页 |
| 简历 | 第59-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 综述 | 第62-84页 |
| 综述参考文献 | 第72-84页 |
| 附页1 | 第84-85页 |
| 附页2 | 第85-86页 |
| 附页3 | 第86页 |