| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第7-22页 |
| ·研究背景和意义 | 第7-9页 |
| ·引言 | 第7-8页 |
| ·薄荷醇简介 | 第8-9页 |
| ·薄荷醇研究的意义 | 第9页 |
| ·光学纯薄荷醇的制备方法 | 第9-15页 |
| ·制备手性药物的一般方法 | 第9-11页 |
| ·薄荷醇的制备方法 | 第11-15页 |
| ·有机相酶催化 | 第15-17页 |
| ·有机相酶催化的优点 | 第16页 |
| ·有机相中酶催化的影响因素 | 第16-17页 |
| ·微生物拆分 | 第17-21页 |
| ·微生物转化反应的特点 | 第17-18页 |
| ·微生物转化方法 | 第18-19页 |
| ·微生物转化反应在药物合成中的应用 | 第19-21页 |
| ·本课题的研究目的与研究思路 | 第21-22页 |
| ·研究目的与研究内容 | 第21页 |
| ·研究思路 | 第21-22页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第22-31页 |
| ·实验材料 | 第22-23页 |
| ·实验试剂 | 第22-23页 |
| ·实验仪器 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23-25页 |
| ·研究内容 | 第23-24页 |
| ·实验体系 | 第24-25页 |
| ·分析方法 | 第25-31页 |
| ·DL-薄荷醇拆分体系的分析方法 | 第25-27页 |
| ·含有4对异构体的薄荷醇混合物拆分体系的分析方法 | 第27-31页 |
| 第三章 DL-薄荷乙酸酯不对称水解菌株的筛选 | 第31-38页 |
| ·前言 | 第31-32页 |
| ·实验材料 | 第32-33页 |
| ·试剂 | 第32页 |
| ·土样 | 第32页 |
| ·筛选培养基组成 | 第32-33页 |
| ·实验方法 | 第33-34页 |
| ·菌种筛选 | 第33-34页 |
| ·菌种鉴定 | 第34页 |
| ·结果与讨论 | 第34-37页 |
| ·采土、富集和分离 | 第34-35页 |
| ·初筛 | 第35页 |
| ·复筛 | 第35-36页 |
| ·终选 | 第36页 |
| ·菌种鉴定结果 | 第36-37页 |
| ·本章小结 | 第37-38页 |
| 第四章 微生物不对称水解拆分制备L-薄荷醇 | 第38-47页 |
| ·前言 | 第38-39页 |
| ·实验材料与实验方法 | 第39-40页 |
| ·实验试剂与实验仪器 | 第39页 |
| ·实验方法 | 第39-40页 |
| ·结果与讨论 | 第40-46页 |
| ·产酶部位的考察 | 第40-41页 |
| ·菌体干重曲线的测定 | 第41页 |
| ·碳源的筛选 | 第41-43页 |
| ·氮源的筛选 | 第43页 |
| ·菌体培养温度的影响 | 第43-44页 |
| ·菌体的生长曲线及产酶时间曲线 | 第44-45页 |
| ·DL-薄荷乙酸酯不对称水解曲线 | 第45页 |
| ·含有4对异构体的薄荷乙酸酯的不对称水解 | 第45-46页 |
| ·本章小结 | 第46-47页 |
| 第五章 有机相中脂肪酶催化不对称转酯化拆分制备L-薄荷醇 | 第47-54页 |
| ·前言 | 第47-48页 |
| ·实验试剂与实验仪器 | 第48页 |
| ·实验方法 | 第48页 |
| ·DL-薄荷醇拆分体系 | 第48页 |
| ·含有4对异构体的薄荷醇混合物拆分体系 | 第48页 |
| ·实验结果 | 第48-53页 |
| ·脂肪酶的筛选 | 第48-49页 |
| ·溶剂的筛选 | 第49-50页 |
| ·反应过程曲线的测定 | 第50-51页 |
| ·含4对异构体的薄荷醇混合物的不对称转酯化 | 第51-52页 |
| ·DL-薄荷醇和新薄荷醇混合物的不对称转酯化 | 第52-53页 |
| ·本章小结 | 第53-54页 |
| 第六章 结论与展望 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-59页 |
| 致谢 | 第59页 |