| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-8页 |
| 第一章 引言 | 第8-18页 |
| 1 多糖的研究概况 | 第8-12页 |
| ·多糖的提取、分离纯化、纯度鉴定及分子量测定 | 第8-9页 |
| ·多糖的结构研究 | 第9-11页 |
| ·多糖的生物活性研究 | 第11-12页 |
| 2 真菌多糖的研究概况 | 第12-14页 |
| ·真菌多糖的分离纯化 | 第12页 |
| ·真菌多糖的结构研究 | 第12-13页 |
| ·真菌多糖的活性研究 | 第13页 |
| ·真菌多糖研究开发现状 | 第13-14页 |
| ·真菌多糖的构效关系 | 第14页 |
| 3 黑木耳多糖的研究概况 | 第14-16页 |
| 4 本文选题依据及研究目标 | 第16-18页 |
| 第二章 结果与讨论 | 第18-45页 |
| 1 黑木耳粗多糖 AA 的研究 | 第18-22页 |
| ·黑木耳粗多糖 AA 的分离提取 | 第18页 |
| ·AA 的总糖含量糖醛酸含量和蛋白含量 | 第18-20页 |
| ·AA 的单糖组成分析 | 第20页 |
| ·AA 的分子量分布 | 第20-22页 |
| 2 黑木耳多糖 AA 的分级纯化 | 第22-29页 |
| ·脱蛋白 | 第22页 |
| ·AA的分级 | 第22-26页 |
| ·AA4H 脱色素并分级 | 第26-27页 |
| ·AA4HE2 的纯度鉴定 | 第27-29页 |
| 3 AA4HE2 的结构研究 | 第29-43页 |
| ·糖含量糖醛酸含量和蛋白含量 | 第29页 |
| ·碘反应实验 | 第29页 |
| ·分子量分布 | 第29-30页 |
| ·组成分析 | 第30页 |
| ·AA4HE2 的高碘酸氧化、Smith 降解分析 | 第30-35页 |
| ·AA4HE2 的甲基化分析 | 第35-41页 |
| ·AA4HE2 的 C NMR 分析 | 第41-42页 |
| ·结构分析结果 | 第42-43页 |
| 4 结论 | 第43-45页 |
| ·黑木耳粗多糖的提取及理化性质 | 第43页 |
| ·黑木耳粗多糖的分离纯化 | 第43页 |
| ·AA4HE2 的结构研究 | 第43-44页 |
| ·讨论 | 第44-45页 |
| 第三章 实验方法 | 第45-54页 |
| 1 实验材料及提取过程 | 第45-46页 |
| 2 粗多糖的提取和分离方法 | 第46页 |
| ·提取 | 第46页 |
| ·常规干燥 | 第46页 |
| ·多糖的分离 | 第46页 |
| ·冰冻干燥 | 第46页 |
| 3 多糖的分级纯化方法 | 第46-48页 |
| ·AA 的水解 | 第46-47页 |
| ·AA4H 的纤维素柱层析分离析 | 第47页 |
| ·分子筛排阻层析柱确定多糖的分子量分布 | 第47-48页 |
| ·用分子筛排阻层析柱确定多糖的分子量 | 第48页 |
| ·用离子交换层析柱确定多糖的极性分布 | 第48页 |
| 4 多糖的组成及含量分析方法 | 第48-51页 |
| ·苯酚-硫酸法测总糖含量 | 第48-49页 |
| ·间羟基联苯法测糖醛酸含量 | 第49页 |
| ·考马斯亮蓝法测定多糖样品中的蛋白含量 | 第49页 |
| ·气相色谱法测定单糖组成 | 第49-50页 |
| ·高效液相色谱法测定单糖组成 | 第50-51页 |
| 5 多糖的结构研究方法 | 第51-54页 |
| ·碘反应 | 第51页 |
| ·高碘酸氧化和 Smith 降解 | 第51-52页 |
| ·甲基化分析 | 第52-53页 |
| ·~(13)C NMR 分析 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-61页 |
| 致谢 | 第61页 |