| 中英文缩写一览表 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 引言 | 第14-17页 |
| 材料和方法 | 第17-37页 |
| 1 材料 | 第17-19页 |
| ·实验动物 | 第17页 |
| ·主要仪器设备 | 第17-18页 |
| ·主要试剂 | 第18-19页 |
| 2. 方法 | 第19-37页 |
| ·神经干细胞的原代培养 | 第19-20页 |
| ·神经干细胞的传代培养 | 第20页 |
| ·神经干细胞的巢蛋白(Nestin)鉴定 | 第20-21页 |
| ·大鼠胚胎mNSCs的体外诱导分化 | 第21-22页 |
| ·大鼠PD模型的建立 | 第22-23页 |
| ·实验动物分组 | 第23页 |
| ·NSCs移植治疗PD大鼠模型 | 第23-24页 |
| ·AMD3100注射 | 第24页 |
| ·行为学检测 | 第24页 |
| ·RT-PCR及weston Blod脑组织的取材 | 第24页 |
| ·实时荧光定量PCR | 第24-34页 |
| ·Western Blot测定SDF-1/CXCR4蛋白水平 | 第34-36页 |
| ·统计方法 | 第36-37页 |
| 结果 | 第37-48页 |
| 1 大鼠胚胎mNSCs的分离培养 | 第37-38页 |
| 2 神经干细胞的传代培养 | 第38页 |
| 3 神经干细胞Nestin免疫荧光标记 | 第38-39页 |
| 4 神经干细胞的诱导分化 | 第39-40页 |
| 5 体外培养的大鼠胚胎中脑神经干细胞分化后多巴胺神经元的鉴定 | 第40-42页 |
| 6 帕金森病大鼠模型的行为学特征 | 第42页 |
| 7 神经干细胞移植前后PD大鼠旋转行为检测结果 | 第42-43页 |
| 8 大鼠脑组织总RNA提取 | 第43-44页 |
| 9 检测cDNA完整性 | 第44页 |
| 10 荧光定量PCR结果 | 第44-46页 |
| 11 Western-Blot结果 | 第46-48页 |
| 讨论 | 第48-59页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-69页 |
| 综述 | 第69-82页 |
| 参考文献 | 第78-82页 |
| 附录 | 第82-85页 |
| 硕士期间发表文章 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86页 |
