| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第1章 文献综述 | 第9-20页 |
| ·芦荟及其研究现状 | 第9-10页 |
| ·芦荟叶片的形态结构 | 第9页 |
| ·芦荟的生物活性物质 | 第9-10页 |
| ·芦荟抗性研究 | 第10页 |
| ·植物转录因子 | 第10-15页 |
| ·转录因子结构 | 第11-12页 |
| ·植物转录因子在逆境中的调控机理及途径 | 第12页 |
| ·DREB转录因子 | 第12-15页 |
| ·基因表达水平分析的方法 | 第15-20页 |
| ·Northern杂交法(Nrothern blots) | 第16页 |
| ·S1核糖核酸酶保护法(Ribonuclease protection assay,RPA) | 第16页 |
| ·半定量逆转录多聚酶链式反应(semiqunantitative reverse transcription and poly-merse chain reaction,Sq RT-PCR) | 第16-17页 |
| ·实时荧光定量PCR(real-time flurescent quantitative PCR,FQ-PCR) | 第17-20页 |
| 第2章 引言 | 第20-22页 |
| ·研究背景和意义 | 第20页 |
| ·技术路线 | 第20-22页 |
| 第3章 实验材料与方法 | 第22-36页 |
| ·实验材料 | 第22-23页 |
| ·植物材料及生长条件 | 第22页 |
| ·菌种与载体 | 第22页 |
| ·主要试剂和试剂盒 | 第22页 |
| ·主要仪器设备与耗材 | 第22页 |
| ·常用溶液配方 | 第22-23页 |
| ·基本培养基配方 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23-36页 |
| ·中华芦荟DNA的提取(CTAB法) | 第23-24页 |
| ·植株RNA提取和CDNA一链合成 | 第24-25页 |
| ·DREB转录因保守序列的获得 | 第25-27页 |
| ·利用3’RACE克隆ADIR五万2和AITINY基因3’端cDNA序列 | 第27-28页 |
| ·ALDREB2和ALTINY基因5′端CDNA的克隆 | 第28-30页 |
| ·ALDREB2和ALTINY基因的全长克隆 | 第30页 |
| ·中华芦荟的不同胁迫处理 | 第30-31页 |
| ·芦荟叶片总RNA的提取和CDNA第一链的合成 | 第31页 |
| ·引物设计 | 第31页 |
| ·ALDREB基因在不同胁迫下表达的半定量RT-PCR分析 | 第31-32页 |
| ·ALTINY基因在不同胁迫下表达的荧光定量分析 | 第32-36页 |
| 第4章 实验结果与分析 | 第36-53页 |
| ·中华芦荟ALDREB2和ALTINY基因的克隆 | 第36-45页 |
| ·保守序列的克隆 | 第36-37页 |
| ·ALDREB2和ALTINY基因全长序列的获得 | 第37页 |
| ·ALDREB2和ALTINY基因编码蛋白的生物信息学分析 | 第37-45页 |
| ·ALDREB和ALTINY基因在不同胁迫下的表达分析 | 第45-53页 |
| ·总RNA提取 | 第45-46页 |
| ·ALDREB2半定量RT-PCR分析 | 第46-48页 |
| ·ALTINY基因在不同胁迫下表达的荧光定量分析 | 第48-53页 |
| 第5章 讨论 | 第53-56页 |
| ·中华芦荟ALDREB和ALTINY基因的克隆 | 第53-54页 |
| ·ALDREB2和ALTINY基因在不同胁迫下的表达分析 | 第54-56页 |
| 第6章 结论 | 第56-58页 |
| ·主要结论 | 第56页 |
| ·创新点和下一步的研究构想 | 第56-58页 |
| ·创新点 | 第56页 |
| ·下一步的研究构想 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 缩略词表 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 在校期间发表论文和参与项目 | 第66页 |
