| 英汉缩略词表 | 第1-9页 |
| 中文摘要 | 第9-13页 |
| ABSTRACT | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-24页 |
| 第一部分 人牙周膜细胞体外培养和低强度脉冲超声辐照模型构建 | 第24-32页 |
| 1 材料和方法 | 第24-27页 |
| ·主要材料与设备 | 第24-25页 |
| ·hPDLCs 原代培养及传代 | 第25页 |
| ·细胞来源鉴定 | 第25-26页 |
| ·hPDLCs 生长曲线和倍增时间 | 第26页 |
| ·hPDLCs 低强度脉冲超声辐照模型建立 | 第26-27页 |
| 2 结果 | 第27-29页 |
| ·细胞生长情况观察 | 第27-28页 |
| ·细胞来源鉴定 | 第28页 |
| ·细胞生长曲线 | 第28页 |
| ·LIPUS 辐照模型的建立 | 第28-29页 |
| 3 讨论 | 第29-31页 |
| ·人牙周膜细胞组织取材方法的选择 | 第29-30页 |
| ·hPDLCs 原代培养方法的选择 | 第30页 |
| ·遴选实验对象hPDLCs | 第30-31页 |
| ·“LIPUS-hPDLC 辐照模型”构建 | 第31页 |
| 4 小结 | 第31-32页 |
| 第二部分LIPUS 对HPDLCS 成骨分化能力的影响 | 第32-40页 |
| 1 材料和方法 | 第33-35页 |
| ·主要材料与设备 | 第33页 |
| ·方法 | 第33-35页 |
| ·实验设计分组方案 | 第33-34页 |
| ·细胞接种及超声辐照处理 | 第34页 |
| ·碱性磷酸酶（ALP）活性检测 | 第34页 |
| ·放射免疫法测定骨钙素（OC） | 第34-35页 |
| ·统计学分析 | 第35页 |
| 2 结果 | 第35-37页 |
| ·不同LIPUS 辐照参数对hPDLCs ALP 活性影响 | 第35-36页 |
| ·LIPUS 辐照对hPDLCs ALP 活性影响的动态观察 | 第36-37页 |
| ·LIPUS 辐照对hPDLCs 骨钙素合成分泌的影响 | 第37页 |
| 3 讨论 | 第37-39页 |
| 4 小结 | 第39-40页 |
| 第三部分 HPDLCS 对LIPUS 的早期响应 | 第40-53页 |
| 1 材料和方法 | 第41-45页 |
| ·主要材料与设备 | 第41-42页 |
| ·方法 | 第42-45页 |
| ·细胞处理及样品收集 | 第42页 |
| ·RT-PCR 检测 | 第42-45页 |
| 2 结果 | 第45-47页 |
| ·提取RNA 质量鉴定 | 第45-46页 |
| ·RT-PCR 结果 | 第46-47页 |
| 3 讨论 | 第47-52页 |
| ·Integrin 与细胞应力响应机制 | 第47-50页 |
| ·AP-1 与细胞信号转导 | 第50-51页 |
| ·Cbfa1 与成骨分化 | 第51-52页 |
| 4 小结 | 第52-53页 |
| 全文总结 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-62页 |
| 附图 | 第62-67页 |
| 综述 低强度脉冲超声波细胞作用机制的研究进展 | 第67-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第82页 |
