| 提要 | 第1-8页 |
| 英文词表 | 第8-10页 |
| 第1章 文献回顾 | 第10-24页 |
| ·核因子-κB研究进展 | 第10-15页 |
| ·核因子-κB及其生物学特性 | 第10-11页 |
| ·核因子-κB的活化调控 | 第11-14页 |
| ·核因子-κB的生物学功能 | 第14页 |
| ·核因子-κB与疾病治疗 | 第14-15页 |
| ·NF-κB圈套策略的应用 | 第15页 |
| ·树突状细胞的研究进展 | 第15-20页 |
| ·树突状细胞的来源与生物学性状 | 第16-17页 |
| ·树突状细胞的生物学功能 | 第17-18页 |
| ·树突状细胞诱导Th1和Th2细胞分化 | 第18-19页 |
| ·树突状细胞与糖尿病的关系 | 第19-20页 |
| ·树突状细胞与糖尿病治疗 | 第20页 |
| ·本课题主要研究技术内容与当前的研究进展与趋势 | 第20-24页 |
| ·电泳迁移率技术在检测核因子-κB蛋白中的应用 | 第21-22页 |
| ·本课题的研究目的 | 第22页 |
| ·具体研究内容 | 第22-23页 |
| ·本课题特色 | 第23-24页 |
| 第2章 材料与方法 | 第24-36页 |
| ·材料 | 第24-26页 |
| ·主要试剂 | 第24-25页 |
| ·主要仪器 | 第25页 |
| ·主要试剂的配制 | 第25-26页 |
| ·ODN序列的制备 | 第26页 |
| ·实验方法 | 第26-36页 |
| ·实验对象及分组 | 第26-27页 |
| ·FCM法测定外周血T细胞亚群(CD3、CD4、CD8和CD4/CD8) | 第27页 |
| ·流式细胞术测定外周血的树突状细胞表面标志 | 第27-28页 |
| ·外周血来源树突状细胞培养及形态学观察 | 第28-30页 |
| ·NF-κB ODN抑制NF-κB活性及阻断DC内NF-κB传导通路研究 | 第30-31页 |
| ·NF-κB ODN对外周血培养DC的表面标志、分泌细胞因子功能作用 | 第31-33页 |
| ·NF-κB ODN培养外周血DC对同种异体T淋巴细胞作用 | 第33-34页 |
| ·统计学分析 | 第34-36页 |
| 第3章 实验结果 | 第36-56页 |
| ·糖尿病患者血糖测定结果 | 第36页 |
| ·糖尿病患者外周血T细胞亚群及DC变化 | 第36-39页 |
| ·外周血T细胞亚群(CD3、CD4、CD8、CD4/CD8) | 第36-38页 |
| ·外周血树突状细胞表面标志变化 | 第38-39页 |
| ·外周血来源树突状细胞培养 | 第39-41页 |
| ·树突状细胞培养后的光学显微镜观察结果 | 第39-40页 |
| ·培养9天后扫描电镜观察细胞形态 | 第40-41页 |
| ·NF-κB ODN转染外周血培养DC1对NF-κB活性的影响 | 第41-46页 |
| ·NF-κB ODN转染外周血培养DC1的效率测定 | 第41-42页 |
| ·NF-κB ODN转入外周血培养DC内对NF-κB p65的影响 | 第42-45页 |
| ·NF-κB ODN对外周血DC1细胞核内NF-κB DNA结合活性的影响 | 第45-46页 |
| ·NF-KB ODN对外周血培养DC1活性的影响 | 第46-56页 |
| ·糖尿病患者培养外周血DC1活化的成熟 | 第46页 |
| ·NF-κB ODN对糖尿病患者外周血培养DC1的表面分子影响 | 第46-49页 |
| ·NF-κB ODN对树突状细胞TNF-α分泌的影响 | 第49-50页 |
| ·NF-κB ODN对外周血树突状细胞IL-12分泌的影响 | 第50-51页 |
| ·NF-κB ODN对外周血DC1刺激T淋巴细胞增殖能力的影响 | 第51页 |
| ·NF-κB ODN对外周血DC1对TH1/TH2细胞因子产生的影响 | 第51-52页 |
| ·NF-κB ODN对外周血DC诱导Th1/Th2淋巴细胞的极化 | 第52-56页 |
| 第4章 讨论 | 第56-64页 |
| 结论 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-82页 |
| 攻读博士期间主要学术成果 | 第82-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 中文摘要 | 第85-89页 |
| ABSTRACT | 第89-93页 |
