| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第11-27页 |
| 1.1 研究背景 | 第11页 |
| 1.2 硅藻中关于硅酸稳定性研究概况 | 第11-13页 |
| 1.3 影响硅酸缩聚形成的因素 | 第13-16页 |
| 1.3.1 pH值对硅酸稳定性的影响 | 第13-14页 |
| 1.3.2 温度对硅酸稳定性的影响 | 第14-15页 |
| 1.3.3 金属离子(多价阳离子)对硅酸稳定性的影响 | 第15-16页 |
| 1.3.4 引入阴离子对硅酸稳定性的影响 | 第16页 |
| 1.4 抑制硅酸缩聚的作用机理 | 第16-19页 |
| 1.4.1 正负电荷吸附作用 | 第16-17页 |
| 1.4.2 氢键作用 | 第17-18页 |
| 1.4.3 复配 | 第18-19页 |
| 1.5 研究硅酸稳定性时可溶性硅的评价方法 | 第19页 |
| 1.6 硅酸缩聚稳定性抑制剂的研究进展 | 第19-24页 |
| 1.6.1 聚合物型硅酸缩聚稳定剂 | 第20-23页 |
| 1.6.2 环境友好型硅酸缩聚稳定剂 | 第23-24页 |
| 1.6.3 复配型硅酸缩聚稳定剂 | 第24页 |
| 1.7 目前影响硅酸缩聚的研究中所面临的问题 | 第24-25页 |
| 1.8 本文的研究思路及技术路线 | 第25-27页 |
| 1.8.1 本文的研究思路 | 第25-26页 |
| 1.8.2 本文的技术路线 | 第26-27页 |
| 第2章 可溶性硅浓度测定方法的建立 | 第27-38页 |
| 2.1 引言 | 第27-28页 |
| 2.2 实验部分 | 第28-31页 |
| 2.2.1 实验药品与仪器 | 第28页 |
| 2.2.2 硅钼蓝分光光度法测定原理 | 第28-29页 |
| 2.2.3 标准溶液的配制 | 第29-30页 |
| 2.2.4 实验方法 | 第30-31页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第31-37页 |
| 2.3.1 溶液温度对硅钼黄显色时间的影响 | 第31页 |
| 2.3.2 钼酸铵的加量对测得吸光度的影响 | 第31-32页 |
| 2.3.3 还原剂及其添加剂量对吸光度的影响 | 第32-33页 |
| 2.3.4 络合物稳定时间的确定 | 第33-34页 |
| 2.3.5 最大吸收波长的选择 | 第34-35页 |
| 2.3.6 可溶性硅浓度标准曲线的绘制 | 第35-36页 |
| 2.3.7 溶液中可溶性硅的测定 | 第36-37页 |
| 2.4 本章小结 | 第37-38页 |
| 第3章 壳聚糖及其衍生物对硅酸溶液稳定性的影响 | 第38-52页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 实验部分 | 第38-40页 |
| 3.2.1 实验药品与仪器 | 第38-39页 |
| 3.2.2 壳聚糖及其衍生物标准溶液的配制 | 第39-40页 |
| 3.2.3 可溶性硅含量的测定 | 第40页 |
| 3.2.4 测试与仪器 | 第40页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第40-51页 |
| 3.3.1 壳聚糖及其衍生物在72h实验中对硅酸溶液稳定性的影响 | 第40-43页 |
| 3.3.2 壳聚糖及其衍生物在8h实验中对硅酸溶液稳定性的影响 | 第43-47页 |
| 3.3.3 壳聚糖及其衍生物对缩聚硅酸表面形态的影响 | 第47-49页 |
| 3.3.4 固态核磁对多硅酸聚合度的表征 | 第49-51页 |
| 3.4 本章小结 | 第51-52页 |
| 第4章 磷酸化壳聚糖及其复配组对硅酸稳定性的影响 | 第52-65页 |
| 4.1 引言 | 第52页 |
| 4.2 实验部分 | 第52-55页 |
| 4.2.1 实验药品与仪器 | 第52-54页 |
| 4.2.2 磷酸化壳聚糖的制备 | 第54页 |
| 4.2.3 测试与仪器 | 第54-55页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第55-64页 |
| 4.3.1 傅里叶变换红外光谱表征分析 | 第55-56页 |
| 4.3.2 磷酸化壳聚糖对硅酸稳定性的影响 | 第56-58页 |
| 4.3.3 壳聚糖衍生物磷酸化壳聚糖复配协同作用的研究 | 第58-63页 |
| 4.3.4 复配前后各组分对缩聚硅酸表面形态的影响 | 第63-64页 |
| 4.4 本章小结 | 第64-65页 |
| 第5章 结论 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-73页 |
| 附录：硕士期间研究成果 | 第73页 |
