摘要 | 第6-9页 |
ABSTRACT | 第9-12页 |
第一章 绪论 | 第13-16页 |
1.1 课题来源、研究的目的和意义 | 第13-14页 |
1.2 国内外研究概况 | 第14-15页 |
1.3 论文的主要研究内容 | 第15-16页 |
第二章 材料与方法 | 第16-33页 |
2.1 实验动物来源 | 第16页 |
2.2 研究资料及仪器设备 | 第16-19页 |
2.2.1 主要设备及器材 | 第16-17页 |
2.2.2 主要试剂 | 第17-18页 |
2.2.3 溶液配制 | 第18-19页 |
2.3 实验流程与方法 | 第19-33页 |
2.3.1 动物模型的建立 | 第19-20页 |
2.3.2 标本采集与检测 | 第20页 |
2.3.3 肾组织病理形态学观察(PAS染色) | 第20-21页 |
2.3.4 免疫组化 | 第21页 |
2.3.5 电镜 | 第21-22页 |
2.3.6 足细胞培养和分组 | 第22-23页 |
2.3.7 CCK-8法检测各组足细胞的增殖 | 第23-24页 |
2.3.8 ELISA法检测足细胞中PGE2含量 | 第24页 |
2.3.9 免疫荧光法检测足细胞相关蛋白nephrin、podocin、CD2AP在足细胞中的定位 | 第24页 |
2.3.10 实时定量PCR检测mRNA表达 | 第24-28页 |
2.3.11 Western印迹法检测各组细胞中蛋白的表达 | 第28-31页 |
2.3.12 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第31-32页 |
2.3.13 统计分析 | 第32-33页 |
第三章 结果 | 第33-46页 |
体内研究结果 | 第33-36页 |
3.1 小鼠的一般情况 | 第33页 |
3.2 尿、血生化指标 | 第33-34页 |
3.2.1 尿蛋白变化 | 第33-34页 |
3.2.2 各组小鼠血清学比较 | 第34页 |
3.3 各组小鼠肾脏病理学改变 | 第34-35页 |
3.4 免疫组化检测肾脏中足细胞相关蛋白的表达变化 | 第35-36页 |
3.5 电镜观察足细胞超微结构的改变 | 第36页 |
体外研究结果 | 第36-46页 |
3.6 EP1激动剂、拮抗剂对ADR诱导的足细胞增殖的影响 | 第36-38页 |
3.7 EP1激动剂、拮抗剂对ADR诱导的足细胞PGE2含量的影响 | 第38页 |
3.8 EP1激动剂、拮抗剂对ADR诱导的足细胞COX2 mRNA及蛋白表达的影响 | 第38-39页 |
3.9 EP1激动剂、拮抗剂对ADR诱导的足细胞nephrin、podocin、CD2AP mRNA及蛋白表达的影响 | 第39-43页 |
3.9.1 足细胞相关蛋白在足细胞中的定位 | 第39-40页 |
3.9.2 EP1激动剂、拮抗剂对ADR诱导的足细胞nephrin、podocin、CD2AP mRNA表达的影响 | 第40-41页 |
3.9.3 EP1激动剂、拮抗剂对ADR诱导的足细胞nephrin、podocin、CD2AP蛋白表达的影响 | 第41-43页 |
3.10 EP1激动剂、拮抗剂对ADR诱导的足细胞p38 MAPK活性的影响 | 第43-44页 |
3.11 EP1激动剂、拮抗剂对ADR诱导的足细胞凋亡的影响 | 第44-46页 |
第四章 讨论 | 第46-50页 |
第五章 结论 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-54页 |
英文缩写词表 | 第54-55页 |
综述 | 第55-64页 |
综述参考文献 | 第60-64页 |
在攻读硕士学位期间公开发表的论文/与参加的项目 | 第64-65页 |
致谢 | 第65页 |