| 中文摘要 | 第4-6页 |
| 英文摘要 | 第6-12页 |
| 英汉缩略语名词对照 | 第12-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-27页 |
| 1.1 癫痫概述 | 第14页 |
| 1.2 长链非编码RNA的概述 | 第14-16页 |
| 1.3 LncRNA参与神经系统的复杂调节 | 第16-17页 |
| 1.4 LncRNA在神经系统中的作用机制 | 第17-18页 |
| 1.5 LncRNA在神经发育及神经系统疾病 | 第18-24页 |
| 1.5.1 LncRNA与神经系统发育 | 第18-19页 |
| 1.5.2 LncRNA与神经元分化 | 第19-20页 |
| 1.5.3 LncRNA与突触重塑 | 第20-21页 |
| 1.5.4 LncRNA与神经系统疾病 | 第21-24页 |
| 1.6 LincRNA-AK035610与癫痫相关性及本文的立题依据 | 第24-26页 |
| 1.7 研究意义 | 第26-27页 |
| 第二章 材料、方法及设计 | 第27-40页 |
| 2.1 实验材料 | 第27-30页 |
| 2.1.1 实验设备及仪器 | 第27-28页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第28-29页 |
| 2.1.3 实验试剂配制 | 第29-30页 |
| 2.2 实验方法 | 第30-40页 |
| 2.2.1 KA诱导癫痫动物模型的建立及处理 | 第30页 |
| 2.2.2 小鼠海马立体定位注射 | 第30-31页 |
| 2.2.3 颞叶癫痫患者脑组织收集 | 第31页 |
| 2.2.4 小鼠原代神经元分离与培养 | 第31-32页 |
| 2.2.5 Lipofectamine~(TM) 2000转染 | 第32页 |
| 2.2.6 LncRNA原位杂交 | 第32-33页 |
| 2.2.7 免疫荧光 | 第33页 |
| 2.2.8 小鼠脑电图记录和行为学观察 | 第33-34页 |
| 2.2.9 动物标本处理 | 第34页 |
| 2.2.10 RNA抽提和纯化及RT-PCR检测 | 第34-37页 |
| 2.2.11 蛋白质免疫印迹 | 第37-39页 |
| 2.2.12 数据统计分析 | 第39-40页 |
| 第三章 实验结果 | 第40-49页 |
| 3.1 海藻酸诱导的癫痫小鼠模型与对照组小鼠海马及皮层组织中长链非编码RNA的芯片检测和结果分析 | 第40-41页 |
| 3.2 海藻酸诱导的癫痫小鼠模型与对照组小鼠海马组织及海藻酸处理神经元细胞中lincRNA-AK035610及靶基因Inhba表达情况和结果分析 | 第41-42页 |
| 3.3 LincRNA-AK035610定位在神经元细胞核内 | 第42-43页 |
| 3.4 经元细胞中敲低lincRNA-AK035610后Inhba的表达以及重组INHBA蛋白处理神经元后的细胞信号改变 | 第43-44页 |
| 3.5 癫痫病人中lincRNA-AK035610同源序列splicing variant 1及INHBA的表达情况及结果分析 | 第44-46页 |
| 3.6 INHBA的重组蛋白可以改善KA诱导的小鼠癫痫样发作 | 第46-47页 |
| 3.7 重组INHBA蛋白可以减少海藻酸诱导的神经元凋亡 | 第47页 |
| 3.8 补充数据 | 第47-49页 |
| 第四章 讨论 | 第49-51页 |
| 第五章 实验结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-65页 |
| 附录 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
