| 致谢 | 第4-8页 |
| 缩略词表 Abbreviation | 第8-9页 |
| 摘要 | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-20页 |
| 1 问题的提出 | 第10-11页 |
| 2 核果类果树离体培养的研究进展 | 第11-16页 |
| 2.1 胚培养 | 第11-12页 |
| 2.1.1 低温处理 | 第11页 |
| 2.1.2 胚龄 | 第11页 |
| 2.1.3 培养基和植物生长调节剂 | 第11-12页 |
| 2.1.4 移栽驯化 | 第12页 |
| 2.2 茎尖培养 | 第12-13页 |
| 2.2.1 基因型和培养基 | 第12页 |
| 2.2.2 取材 | 第12页 |
| 2.2.3 外植体的消毒 | 第12-13页 |
| 2.2.4 植物生长调节剂 | 第13页 |
| 2.3 子叶 | 第13页 |
| 2.4 叶片 | 第13-14页 |
| 2.5 胚轴 | 第14页 |
| 2.6 花药培养 | 第14-16页 |
| 2.6.1 花粉的发育状态 | 第14页 |
| 2.6.2 基因型 | 第14-15页 |
| 2.6.3 预处理 | 第15页 |
| 2.6.4 培养基 | 第15页 |
| 2.6.5 外植体的消毒 | 第15页 |
| 2.6.6 植物生长调节剂 | 第15页 |
| 2.6.7 碳源 | 第15-16页 |
| 2.6.8 其他添加 | 第16页 |
| 3 桃和李的遗传转化研究进展 | 第16-19页 |
| 3.1 桃的遗传转化研究进展 | 第16-17页 |
| 3.1.1 农杆菌介导的遗传转化 | 第16-17页 |
| 3.1.2 基因枪法转化桃 | 第17页 |
| 3.2 李的遗传转化研究进展 | 第17-19页 |
| 3.2.1 影响李转化效率的因素 | 第17-19页 |
| 3.2.1.1 培养基 | 第17-18页 |
| 3.2.1.2 基因型 | 第18页 |
| 3.2.1.3 菌株和质粒 | 第18页 |
| 3.2.1.4 菌液浓度和侵染时间 | 第18页 |
| 3.2.1.5 植物生长调节剂 | 第18-19页 |
| 3.2.1.6 抗生素的筛选 | 第19页 |
| 3.2.1.7 其他 | 第19页 |
| 3.2.2 基因 | 第19页 |
| 4 研究目的及意义 | 第19-20页 |
| 第二章 桃花药培养及愈伤组织的诱导 | 第20-29页 |
| 1 引言 | 第20-21页 |
| 2 材料和方法 | 第21-23页 |
| 2.1 试验材料 | 第21页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第21页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第21页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第21页 |
| 2.2 方法 | 第21-23页 |
| 2.2.1 确定花药的发育时期 | 第21页 |
| 2.2.2 花蕾的消毒 | 第21-22页 |
| 2.2.3 胚性愈伤组织的诱导 | 第22页 |
| 2.2.4 石蜡切片的制作及镜检 | 第22-23页 |
| 2.2.4.1 材料的固定 | 第22页 |
| 2.2.4.2 石蜡切片制作方法 | 第22-23页 |
| 2.2.4.3 镜检 | 第23页 |
| 2.3 数据分析 | 第23页 |
| 3 结果与分析 | 第23-28页 |
| 3.1 单核期的花蕾发育状态及镜检 | 第23-24页 |
| 3.2 不同消毒时间处理对外植体的影响 | 第24页 |
| 3.3 不同培养基对花瓣及花药愈伤组织形成的影响 | 第24-27页 |
| 3.4 愈伤组织形态学及细胞学观察 | 第27-28页 |
| 4 结论与讨论 | 第28-29页 |
| 4.1 .讨论 | 第28页 |
| 4.1.1 不同花药发育时期对愈伤组织诱导的影响 | 第28页 |
| 4.1.2 不同消毒方式及处理时间对初代培养的影响 | 第28页 |
| 4.1.3 不同培养基和植物生长调节剂配比对愈伤组织诱导的影响 | 第28页 |
| 4.1.4 愈伤组织形态学及细胞学观察 | 第28页 |
| 4.2 结论 | 第28-29页 |
| 第三章 李遗传转化体系构建初探 | 第29-42页 |
| 1 引言 | 第29-30页 |
| 2 材料和方法 | 第30-34页 |
| 2.1 材料 | 第30-31页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第30页 |
| 2.1.2 农杆菌菌株和质粒 | 第30页 |
| 2.1.3 主要药品试剂 | 第30-31页 |
| 2.1.4 主要仪器设备 | 第31页 |
| 2.1.5 基本培养基 | 第31页 |
| 2.1.6 培养条件 | 第31页 |
| 2.2 方法 | 第31-33页 |
| 2.2.1 种子收集 | 第31页 |
| 2.2.2 外植体准备 | 第31-32页 |
| 2.2.3 质粒提取 | 第32页 |
| 2.2.4 PCR检测 | 第32页 |
| 2.2.5 重组质粒转化GV3101感受态细胞 | 第32-33页 |
| 2.2.6 农杆菌的培养与活化 | 第33页 |
| 2.2.7 外植体的转化 | 第33页 |
| 2.2.7.1 下胚轴的转化 | 第33页 |
| 2.2.7.2 子叶的转化 | 第33页 |
| 2.3 不同培养基对下胚轴愈伤组织褐化的影响 | 第33页 |
| 2.4 GUS组织化学检测 | 第33-34页 |
| 2.5 数据统计与分析 | 第34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-40页 |
| 3.1 以‘脆红’李遗传转化初探 | 第34-37页 |
| 3.1.1 以下胚轴切片为外植体的遗传转化 | 第34-35页 |
| 3.1.2 分析不同培养基对下胚轴切片褐化的影响 | 第35-36页 |
| 3.1.3 以子叶为外植体的遗传转化 | 第36-37页 |
| 3.2 ‘黑宝石’李的遗传转化 | 第37-40页 |
| 3.2.1 ‘黑宝石’李下胚轴切片的遗传转化 | 第37-38页 |
| 3.2.2 以子叶为外植体的遗传转化 | 第38-40页 |
| 4 结论和讨论 | 第40-42页 |
| 4.1 讨论 | 第40-41页 |
| 4.1.1 不同菌株对转化效率的影响 | 第40页 |
| 4.1.2 不同菌液浓度对转化效率的影响 | 第40-41页 |
| 4.1.3 不同防褐化剂对外植体褐化的影响 | 第41页 |
| 4.2 结论 | 第41-42页 |
| 4.2.1 ‘脆红’李的遗传转化 | 第41页 |
| 4.2.2 ‘黑宝石’李的遗传转化 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-49页 |
| ABSTRACT | 第49-50页 |