| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 缩略词表 | 第14-15页 |
| 第一章 前言 | 第15-27页 |
| 1 课题的提出 | 第15页 |
| 2 国内外研究进展 | 第15-25页 |
| 2.1 盐胁迫下植物的伤害机制 | 第15-16页 |
| 2.1.1 渗透胁迫 | 第15-16页 |
| 2.1.2 离子毒害 | 第16页 |
| 2.1.3 氧化胁迫 | 第16页 |
| 2.2 嫁接提高植物耐盐的机制 | 第16-20页 |
| 2.2.1 嫁接限制盐害离子向地上部转运 | 第16-18页 |
| 2.2.2 嫁接降低植物盐胁迫下氧化伤害 | 第18-19页 |
| 2.2.3 嫁接增强盐胁迫下植物气孔调控能力 | 第19-20页 |
| 2.3 H_2O_2信号在盐胁迫中的作用 | 第20-24页 |
| 2.3.1 盐胁迫下H_2O_2的产生和清除 | 第20-21页 |
| 2.3.2 H_2O_2信号与Na~+转运 | 第21-22页 |
| 2.3.3 H_2O_2与植物信号转导 | 第22-24页 |
| 2.4 植物NADPH氧化酶研究进展 | 第24-25页 |
| 2.5 NMT技术在植物耐盐研究中的应用 | 第25页 |
| 3 本研究的目的和意义、内容 | 第25-27页 |
| 3.1 目的和意义 | 第25-26页 |
| 3.2 研究内容 | 第26-27页 |
| 第二章 不同浓度NaCl处理对两个嫁接组合黄瓜生长的影响 | 第27-34页 |
| 前言 | 第27页 |
| 1 材料与方法 | 第27-29页 |
| 1.1 材料 | 第27页 |
| 1.2 嫁接和NaCl处理 | 第27-28页 |
| 1.3 测定方法 | 第28-29页 |
| 1.3.1 植株形态分析 | 第28页 |
| 1.3.2 叶绿素荧光测定 | 第28页 |
| 1.3.3 H_2O_2含量测定 | 第28-29页 |
| 1.4 数据分析 | 第29页 |
| 2 结果与分析 | 第29-32页 |
| 2.1 不同浓度NaCl处理对生长的抑制 | 第29-30页 |
| 2.2 不同浓度NaCl处理对叶绿素荧光的影响 | 第30-31页 |
| 2.3 不同浓度NaCl处理对H_2O_2积累的影响 | 第31-32页 |
| 3 讨论 | 第32-33页 |
| 4 小结 | 第33-34页 |
| 第三章 两个嫁接组合H_2O_2信号形成的规律 | 第34-44页 |
| 前言 | 第34页 |
| 1 材料与方法 | 第34-36页 |
| 1.1 材料 | 第34页 |
| 1.2 嫁接和NaCl处理 | 第34页 |
| 1.3 测定方法 | 第34-36页 |
| 1.3.1 Na~+、K~+含量测定 | 第34-35页 |
| 1.3.2 H_2O_2含量测定 | 第35页 |
| 1.3.3 激光共聚焦观测 | 第35页 |
| 1.3.4 光合参数和叶绿素荧光测定 | 第35页 |
| 1.3.5 SOS1和PMA表达量测定 | 第35-36页 |
| 2 结果与分析 | 第36-42页 |
| 2.1 不同NaCl处理时间对Na~+、K~+积累的影响 | 第36-37页 |
| 2.2 不同NaCl处理时间对H_2O_2积累的影响 | 第37-38页 |
| 2.3 不同NaCl处理时间对光合参数及叶绿素荧光的影响 | 第38-40页 |
| 2.4 不同NaCl处理时间对根系SOS1、PMA基因表达的影响 | 第40-41页 |
| 2.5 瞬间NaCl处理下南瓜根尖H_2O_2信号的激光共聚焦观测 | 第41-42页 |
| 3 讨论 | 第42-43页 |
| 4 小结 | 第43-44页 |
| 第四章 根源H_2O_2信号对两个嫁接组合Na~+转运的影响 | 第44-62页 |
| 前言 | 第44页 |
| 1 材料与方法 | 第44-48页 |
| 1.1 材料 | 第44页 |
| 1.2 嫁接和处理方法 | 第44-45页 |
| 1.2.1 嫁接方法 | 第44页 |
| 1.2.2 抑制剂预处理方法 | 第44-45页 |
| 1.3 测定方法 | 第45-48页 |
| 1.3.1 H_2O_2含量的测定 | 第45页 |
| 1.3.2 H_2O_2的激光共聚焦观测 | 第45页 |
| 1.3.3 Na~+的激光共聚焦观测 | 第45页 |
| 1.3.4 离子流速的监测 | 第45-47页 |
| 1.3.5 根系NADPH氧化酶及H~+-ATPase活性的测定 | 第47-48页 |
| 1.3.6 相关基因表达量的测定 | 第48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-59页 |
| 2.1 DPI、DMTU对根源H_2O_2含量影响 | 第48-50页 |
| 2.2 根源H_2O_2信号对Na~+、K~+积累的影响 | 第50-51页 |
| 2.3 根源H_2O_2信号对根尖Na~+、K~+、H~+流速的影响 | 第51-53页 |
| 2.4 根源H_2O_2信号对嫁接愈合位点上下切口Na~+、K~+流速的影响 | 第53-54页 |
| 2.5 嫁接愈合位点上下切口处维管束Na~+荧光染色 | 第54-55页 |
| 2.6 根源H_2O_2信号对质膜H~+-ATPase和NADPH氧化酶活性影响 | 第55-56页 |
| 2.7 根源H_2O_2信号对蒸腾作用的影响 | 第56-57页 |
| 2.8 Rboh家族相关基因表达分析 | 第57-59页 |
| 3 讨论 | 第59-61页 |
| 4 小结 | 第61-62页 |
| 第五章 根源H_2O_2对两个嫁接组合抗氧化酶活性的影响 | 第62-74页 |
| 前言 | 第62页 |
| 1 材料与方法 | 第62-64页 |
| 1.1 材料 | 第62页 |
| 1.2 嫁接和处理方法 | 第62-63页 |
| 1.2.1 嫁接方法 | 第62页 |
| 1.2.2 NaCl处理方法 | 第62页 |
| 1.2.3 抑制剂DPI和Fluridone预处理方法 | 第62-63页 |
| 1.3 测定方法 | 第63-64页 |
| 1.3.1 抗氧化酶测定方法 | 第63-64页 |
| 1.3.2 抗氧化酶相关基因表达量测定 | 第64页 |
| 1.3.3 木质部汁液中H_2O_2和ABA测定 | 第64页 |
| 2 结果与分析 | 第64-72页 |
| 2.1 不同处理时间对抗氧化酶活性的影响 | 第64-66页 |
| 2.2 抑制剂DPI对抗氧化酶活性的影响 | 第66-68页 |
| 2.3 抗氧化酶相关基因表达分析 | 第68-72页 |
| 3 讨论 | 第72-73页 |
| 4 小结 | 第73-74页 |
| 第六章 南瓜NADPH氧化酶家族基因亚细胞定位 | 第74-85页 |
| 前言 | 第74页 |
| 1 材料与方法 | 第74-77页 |
| 1.1 试验材料 | 第74页 |
| 1.2 试验方法 | 第74-77页 |
| 1.2.1 南瓜Rboh基因家族成员的鉴定 | 第74-75页 |
| 1.2.2 不同非生物胁迫下南瓜Rboh基因表达情况 | 第75页 |
| 1.2.3 南瓜Rboh基因亚细胞定位 | 第75-77页 |
| 2 结果与分析 | 第77-83页 |
| 2.1 南瓜Rboh家族基因的进化树分析 | 第77-81页 |
| 2.2 南瓜Rboh家族基因表达分析 | 第81-82页 |
| 2.3 南瓜Rboh基因的亚细胞定位 | 第82-83页 |
| 3 讨论 | 第83-84页 |
| 4 小结 | 第84-85页 |
| 第七章 全文结论及未来研究展望 | 第85-88页 |
| 1 结论 | 第85-87页 |
| 2 展望 | 第87-88页 |
| 参考文献 | 第88-104页 |
| 附录 | 第104-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
