| 中文摘要 | 第3-6页 |
| 英文摘要 | 第6-9页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 1. 材料 | 第15-19页 |
| 1.1 实验动物 | 第15页 |
| 1.2 主要试剂 | 第15-16页 |
| 1.3 主要实验仪器 | 第16-17页 |
| 1.4.手术器械及仪器 | 第17页 |
| 1.5 培养液和基础试剂的配制 | 第17-19页 |
| 1.5.1 胎牛血清的分类 | 第17页 |
| 1.5.2 DMEM/F12培养基的配置 | 第17页 |
| 1.5.3 常规的OM-MSs培养液制备 | 第17-18页 |
| 1.5.4 无菌PBS平衡盐溶液制备 | 第18页 |
| 1.5.5 0.25%胰蛋白酶的制备 | 第18-19页 |
| 2. 方法 | 第19-27页 |
| 2.1 OM-MSCs取材和培养 | 第19页 |
| 2.2 OM-MSCs的传代 | 第19-20页 |
| 2.3 细胞冻存与细胞复苏 | 第20页 |
| 2.4 OM-MSCs细胞表面标记鉴定及细胞周期检测 | 第20-21页 |
| 2.4.1 流式细胞表面标记物鉴定 | 第20页 |
| 2.4.2 流式细胞周期检测 | 第20-21页 |
| 2.5 细胞免疫荧光 | 第21页 |
| 2.6 体外定向诱导分化 | 第21-22页 |
| 2.6.1 向脂肪细胞诱导 | 第21-22页 |
| 2.6.1.1 诱导方法 | 第21页 |
| 2.6.1.2 脂肪组织的油红O染色鉴定 | 第21-22页 |
| 2.6.2 向成骨细胞诱导 | 第22页 |
| 2.6.2.1 诱导方法 | 第22页 |
| 2.6.2.2 茜素红染色OM-MSCs后钙化结节鉴定 | 第22页 |
| 2.7 阿尔茨海默病动物模型的制备 | 第22-23页 |
| 2.8 实验分组及干预方法与剂量 | 第23页 |
| 2.9 细胞移植后行为学检测 | 第23-24页 |
| 2.10 移植前后脑组织内细胞HE染色 | 第24页 |
| 2.11 移植前后脑组织硫磺素染色 | 第24页 |
| 2.12 细胞移植后外周血ELISA检测方法 | 第24-25页 |
| 2.13 统计学处理 | 第25-27页 |
| 3. 结果 | 第27-37页 |
| 3.1 OM-MSCs的形态特征 | 第27-28页 |
| 3.2 OM-MSCs标记物 | 第28-29页 |
| 3.3 第4代OM-MSCs体外成骨成脂诱导分化 | 第29页 |
| 3.4 第4代OM-MSCs的细胞周期 | 第29-30页 |
| 3.5 阿尔茨海默病SD大鼠模型的建立与鉴定 | 第30-32页 |
| 3.6 干预1个月后行水迷宫定位航行实验结果 | 第32-34页 |
| 3.7 干预45d后脑内BrdU检测与细胞HE、硫黄素染色 | 第34-35页 |
| 3.8 干预45d后IL-6与BDNF在血清中的浓度 | 第35-37页 |
| 4. 讨论 | 第37-41页 |
| 4.1 阿尔茨海默病是目前神经学科领域难题之一 | 第37-38页 |
| 4.2 SD大鼠OM-MSCs的培养及生物学特性研究 | 第38-39页 |
| 4.3 OM-MSCs与免疫抑制剂改善AD模型鼠的学习、记忆能力及相关机制 | 第39-41页 |
| 5. 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-45页 |
| 综述 | 第45-54页 |
| 参考文献 | 第51-54页 |
| 主要缩写词表 | 第54-55页 |
| 在读期间发表的主要学术论文及参与课题 | 第55-57页 |
| 致谢 | 第57-59页 |
