| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第17-40页 |
| 1.1 前言 | 第17页 |
| 1.2 茯苓多糖的研究概况 | 第17-31页 |
| 1.2.1 茯苓多糖的提取分离 | 第18-19页 |
| 1.2.2 茯苓多糖的纯化 | 第19-20页 |
| 1.2.3 茯苓多糖的结构分析 | 第20-24页 |
| 1.2.4 茯苓多糖的化学修饰 | 第24-25页 |
| 1.2.5 茯苓多糖的生物活性 | 第25-30页 |
| 1.2.6 茯苓多糖的构效关系 | 第30-31页 |
| 1.3 炎症性肠病(IBD)研究进展 | 第31-34页 |
| 1.3.1 IBD概述 | 第31页 |
| 1.3.2 IBD发病机制 | 第31-33页 |
| 1.3.3 IBD动物模型 | 第33-34页 |
| 1.4 蛋白质组学研究进展 | 第34-36页 |
| 1.4.1 蛋白质组学概述 | 第34-35页 |
| 1.4.2 蛋白质组学iTRAQ技术 | 第35-36页 |
| 1.5 代谢组学研究进展 | 第36-37页 |
| 1.5.1 代谢组学概述 | 第36页 |
| 1.5.2 代谢组学研究方法 | 第36-37页 |
| 1.6 课题的研究意义和研究内容 | 第37-40页 |
| 1.6.1 研究意义 | 第37-38页 |
| 1.6.2 主要研究内容 | 第38-40页 |
| 第二章 羧甲基茯苓多糖的分离纯化与结构鉴定 | 第40-63页 |
| 2.1 前言 | 第40-41页 |
| 2.2 实验材料与试剂 | 第41-42页 |
| 2.3 主要仪器与设备 | 第42-43页 |
| 2.4 实验方法 | 第43-48页 |
| 2.4.1 羧甲基茯苓多糖的分离 | 第43-44页 |
| 2.4.2 羧甲基茯苓多糖的离子交换柱层析纯化 | 第44-45页 |
| 2.4.3 羧甲基茯苓多糖的凝胶柱层析纯化 | 第45页 |
| 2.4.4 纯度的测定 | 第45-46页 |
| 2.4.5 分子量的测定 | 第46页 |
| 2.4.6 羧甲基茯苓多糖的一般理化鉴定 | 第46页 |
| 2.4.7 紫外光谱扫描 | 第46-47页 |
| 2.4.8 红外光谱扫描 | 第47页 |
| 2.4.9 单糖组成分析 | 第47页 |
| 2.4.10 高碘酸氧化和Smith降解 | 第47-48页 |
| 2.4.11 核磁共振分析 | 第48页 |
| 2.4.12 三螺旋结构分析 | 第48页 |
| 2.5 实验结果 | 第48-60页 |
| 2.5.1 羧甲基茯苓多糖的离子交换层析纯化结果 | 第48-49页 |
| 2.5.2 羧甲基茯苓多糖的葡聚糖凝胶层析纯化结果 | 第49-50页 |
| 2.5.3 羧甲基茯苓多糖的纯度鉴定 | 第50页 |
| 2.5.4 羧甲基茯苓多糖分子量的分布 | 第50-52页 |
| 2.5.5 羧甲基茯苓多糖的一般理化鉴定结果 | 第52页 |
| 2.5.6 紫外扫描结果分析 | 第52页 |
| 2.5.7 红外光谱结果分析 | 第52-53页 |
| 2.5.8 单糖组成分析 | 第53-55页 |
| 2.5.9 高碘酸氧化与Smith降解分析 | 第55-57页 |
| 2.5.10 核磁共振波谱分析 | 第57-59页 |
| 2.5.11 刚果红实验结果分析 | 第59-60页 |
| 2.6 结果讨论 | 第60-61页 |
| 2.7 本章小结 | 第61-63页 |
| 第三章 羧甲基茯苓多糖的体外活性研究 | 第63-101页 |
| 3.1 前言 | 第63-64页 |
| 3.2 实验材料 | 第64-66页 |
| 3.2.1 实验试剂及材料 | 第64-65页 |
| 3.2.2 主要仪器与设备 | 第65-66页 |
| 3.3 实验内容及方法 | 第66-73页 |
| 3.3.1 体外抗氧化活性评价 | 第66-69页 |
| 3.3.2 体外抗肿瘤活性评价 | 第69-70页 |
| 3.3.3 体外抗炎活性评价 | 第70-73页 |
| 3.3.4 统计分析 | 第73页 |
| 3.4 实验结果 | 第73-93页 |
| 3.4.1 体外抗氧化活性评价 | 第73-79页 |
| 3.4.2 体外抗肿瘤活性评价 | 第79-82页 |
| 3.4.3 体外抗炎活性评价 | 第82-93页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第93-98页 |
| 3.6 本章小结 | 第98-101页 |
| 第四章 CMP33对TNBS诱导的炎症性肠病的治疗研究 | 第101-129页 |
| 4.1 前言 | 第101页 |
| 4.2 实验材料 | 第101-105页 |
| 4.2.1 实验试剂及材料 | 第101-103页 |
| 4.2.2 主要仪器与设备 | 第103页 |
| 4.2.3 实验动物 | 第103-104页 |
| 4.2.4 主要溶液配制 | 第104-105页 |
| 4.3 实验内容及方法 | 第105-110页 |
| 4.3.1 急性肠炎模型的建立 | 第105页 |
| 4.3.2 给药 | 第105页 |
| 4.3.3 疾病活动指数评分 | 第105-106页 |
| 4.3.4 结肠取材 | 第106页 |
| 4.3.5 结肠宏观评分(Macroscopicscore) | 第106-107页 |
| 4.3.6 结肠病理切片组织学评分(Histologyscore) | 第107-108页 |
| 4.3.7 结肠组织MPO测定 | 第108-109页 |
| 4.3.8 结肠组织MDA测定 | 第109页 |
| 4.3.9 结肠组织与血液ELISA试剂盒测定 | 第109-110页 |
| 4.3.10 数据统计 | 第110页 |
| 4.4 实验结果 | 第110-124页 |
| 4.4.1 IBD小鼠生存状况及疾病活动指数 | 第110-112页 |
| 4.4.2 IBD小鼠结肠组织宏观病理改变 | 第112-114页 |
| 4.4.3 IBD小鼠结肠组织微观病理改变 | 第114-116页 |
| 4.4.4 IBD小鼠结肠组织MPO活性变化 | 第116页 |
| 4.4.5 IBD小鼠结肠组织MDA活性变化 | 第116-117页 |
| 4.4.6 IBD小鼠结肠组织和血液中各类细胞因子含量变化 | 第117-124页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第124-126页 |
| 4.6 本章小结 | 第126-129页 |
| 第五章 CMP33对TNBS诱导IBD模型的蛋白组学研究 | 第129-191页 |
| 5.1 前言 | 第129-130页 |
| 5.2 实验材料 | 第130-134页 |
| 5.2.1 实验试剂及材料 | 第130-132页 |
| 5.2.2 主要仪器及设备 | 第132页 |
| 5.2.3 实验动物 | 第132-133页 |
| 5.2.4 主要溶液配制 | 第133-134页 |
| 5.3 实验方法 | 第134-141页 |
| 5.3.1 样本信息 | 第134页 |
| 5.3.2 蛋白质提取 | 第134页 |
| 5.3.3 蛋白质的酶解 | 第134-135页 |
| 5.3.4 肽段标记 | 第135-136页 |
| 5.3.5 标记肽段除盐 | 第136页 |
| 5.3.6 高pH反相液相色谱分析 | 第136页 |
| 5.3.7 低pHnano-HPLC-MS/MS联用分析 | 第136-137页 |
| 5.3.8 蛋白质定性与定量分析 | 第137-139页 |
| 5.3.9 层次聚类分析 | 第139页 |
| 5.3.10 差异蛋白GO分析 | 第139页 |
| 5.3.11 差异蛋白Pathway分析 | 第139页 |
| 5.3.12 差异蛋白互作网络构建 | 第139页 |
| 5.3.13 免疫印迹验证 | 第139-141页 |
| 5.3.14 统计分析 | 第141页 |
| 5.4 实验结果 | 第141-187页 |
| 5.4.1 鉴定质量评估 | 第141-144页 |
| 5.4.2 IBD模型差异蛋白分析研究 | 第144-154页 |
| 5.4.3 CMP33(H)抗IBD作用相关差异蛋白分析研究 | 第154-164页 |
| 5.4.4 CMP33(L)抗IBD作用相关差异蛋白分析研究 | 第164-177页 |
| 5.4.5 SASP抗IBD作用相关差异蛋白分析研究 | 第177-187页 |
| 5.4.8 结肠组织差异蛋白的Westernblot验证 | 第187页 |
| 5.5 结果与讨论 | 第187-189页 |
| 5.6 本章小结 | 第189-191页 |
| 第六章 CMP33对TNBS诱导IBD模型的代谢组学研究 | 第191-214页 |
| 6.1 前言 | 第191-192页 |
| 6.2 实验材料 | 第192页 |
| 6.2.1 实验试剂及材料 | 第192页 |
| 6.2.2 主要仪器及设备 | 第192页 |
| 6.2.3 实验动物 | 第192页 |
| 6.3 实验方法 | 第192-194页 |
| 6.3.1 样本信息 | 第192-193页 |
| 6.3.2 代谢物萃取 | 第193页 |
| 6.3.3 代谢物衍生化 | 第193页 |
| 6.3.4 上机检测 | 第193页 |
| 6.3.5 统计学分析 | 第193-194页 |
| 6.4 实验结果 | 第194-212页 |
| 6.4.1 GC-TOF-MS检测结果 | 第194-196页 |
| 6.4.2 PCA分析结果 | 第196页 |
| 6.4.3 IBD相关差异代谢物分析研究 | 第196-200页 |
| 6.4.4 CMP33(H)抗IBD作用相关差异代谢物分析研究 | 第200-204页 |
| 6.4.5 CMP33(L)抗IBD作用相关差异代谢物分析研究 | 第204-207页 |
| 6.4.6 SASP抗IBD作用相关差异代谢物分析研究 | 第207-212页 |
| 6.5 结果与讨论 | 第212页 |
| 6.6 本章小结 | 第212-214页 |
| 结论与展望 | 第214-219页 |
| 附录 | 第219-220页 |
| 参考文献 | 第220-251页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第251-252页 |
| 致谢 | 第252-253页 |
| 附件 | 第253页 |
