| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-7页 |
| 第1章 引言 | 第11-23页 |
| 1.1 甘蔗宿根矮化病研究进展综述 | 第11-18页 |
| 1.1.1 甘蔗宿根矮化病的发现与调查 | 第11-13页 |
| 1.1.2 甘蔗宿根矮化病致病菌Leifsoniaxylisubsp.xyli | 第13-15页 |
| 1.1.3 甘蔗宿根矮化病的检测与防治 | 第15-16页 |
| 1.1.4 Lxx与甘蔗的互作研究 | 第16-18页 |
| 1.2 植物C4光合作用途径简述 | 第18-21页 |
| 1.2.1 C4途径光合作用的优越性 | 第19-20页 |
| 1.2.2 C4关键酶酶活特性以及测定原理 | 第20-21页 |
| 1.3 选题依据、研究内容及意义 | 第21-23页 |
| 第2章 甘蔗宿根矮化病菌的分离、培养与鉴定 | 第23-33页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第23-28页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.1.2 主要实验试剂和仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.3 蔗汁RSD感病性检测 | 第24-25页 |
| 2.1.4 RSD病原菌Lxx的分离、培养 | 第25-26页 |
| 2.1.5 病原菌Lxx的形态学鉴定 | 第26页 |
| 2.1.6 病原菌Lxx分子生物学鉴定 | 第26-28页 |
| 2.2 实验结果与分析 | 第28-33页 |
| 2.2.1 疑似染RSD蔗株的PCR鉴定 | 第28页 |
| 2.2.2 病原菌Lxx的分离培养及形态学特征 | 第28-29页 |
| 2.2.3 病原菌Lxx的分子生物学鉴定 | 第29-33页 |
| 第3章 感染RSD蔗株的解剖结构与Lxx的组织定位 | 第33-53页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第33-40页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第33页 |
| 3.1.2 主要生化试剂和仪器 | 第33-35页 |
| 3.1.3 树脂半薄切片的制作 | 第35页 |
| 3.1.4 树脂半薄切片多糖染色 | 第35-36页 |
| 3.1.5 对冰冻切片中Lxx直接原位PCR方法的建立 | 第36-40页 |
| 3.2 实验结果与分析 | 第40-50页 |
| 3.2.1 RSD蔗株与健康蔗株局部组织结构差异 | 第40-42页 |
| 3.2.2 RSD蔗株与健康甘蔗叶片多糖染色情况 | 第42-43页 |
| 3.2.3 Lxx在甘蔗茎、叶中的定植区 | 第43-50页 |
| 3.3 讨论 | 第50-53页 |
| 3.3.1 于冰冻切片上直接原位PCR探究Lxx定植区 | 第50-51页 |
| 3.3.2 基于Lxx定植区结构功能对Lxx致病性的思考 | 第51-53页 |
| 第4章 Lxx侵染对甘蔗C4途径酶活性及基因表达的影响 | 第53-75页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第53-59页 |
| 4.1.1 材料处理 | 第53-54页 |
| 4.1.2 主要生化试剂和仪器 | 第54页 |
| 4.1.3 qPCR定量分析叶片中Lxx细胞数量 | 第54-55页 |
| 4.1.4 Lxx侵染下甘蔗差异表达基因富集分析 | 第55-56页 |
| 4.1.5 甘蔗C4途径关键酶活的测定 | 第56-57页 |
| 4.1.6 甘蔗C4途径关键酶基因表达量的测定 | 第57-59页 |
| 4.2 实验结果与分析 | 第59-72页 |
| 4.2.1 接种后不同时期甘蔗叶片中Lxx细胞数量变化 | 第59-61页 |
| 4.2.2 Lxx侵染下甘蔗差异表达基因富集分析 | 第61-68页 |
| 4.2.3 Lxx侵染对甘蔗叶中C4途径关键酶活的影响 | 第68-70页 |
| 4.2.4 Lxx侵染对甘蔗叶中C4途径关键酶基因表达量的影响 | 第70-72页 |
| 4.3 讨论 | 第72-75页 |
| 4.3.1 Lxx侵染对甘蔗C4途径酶活性及基因表达的影响 | 第72-73页 |
| 4.3.2 基于Lxx侵染下C4循环关键酶的响应对Lxx致病性的思考 | 第73-75页 |
| 第5章 总结与展望 | 第75-77页 |
| 5.1 总结 | 第75页 |
| 5.2 创新点 | 第75-76页 |
| 5.3 不足与展望 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-87页 |
| 致谢 | 第87-89页 |
| 个人简历、在校期间发表的学术论文和研究成果 | 第89页 |
