| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第10-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-14页 |
| 第2章 材料与方法 | 第14-26页 |
| 2.1 主要材料与试剂 | 第14-15页 |
| 2.2 实验主要仪器和设备 | 第15页 |
| 2.3 主要试剂的配置 | 第15-16页 |
| 2.4 实验方法 | 第16-25页 |
| 2.4.1 构建Tyro3-pEGFP-N1和Axl-pEGFP-N1质粒 | 第16页 |
| 2.4.2 RAW264.7的体外培养 | 第16-18页 |
| 2.4.3 质粒DNA转化感受态DH5α大肠杆菌 | 第18页 |
| 2.4.4 质粒DNA转染RAW264.7小鼠巨噬细胞 | 第18页 |
| 2.4.5 细胞总蛋白的提取 | 第18-19页 |
| 2.4.6 ELISA法检测各组巨噬细胞中细胞因子IL-6、IL-10、IL-33、TNFα的分泌 | 第19-21页 |
| 2.4.7 RealtimeQ-PCR检测各实验组IL-6、MYD88、TLR4、TNF-α mRNA的表达水平 | 第21-23页 |
| 2.4.8 免疫印迹测各组细胞中SOCS1、SOCS3、TLR4、NF-κB蛋白的表达 | 第23-25页 |
| 2.4.9 CS-CNT的制备 | 第25页 |
| 2.5 数据处理 | 第25-26页 |
| 第3章 实验结果 | 第26-39页 |
| 3.1 Tyro3-pEGFP-N1和Axl-pEGFP-N1质粒的鉴定 | 第26-27页 |
| 3.1.1 酶切鉴定 | 第26页 |
| 3.1.2 测序鉴定 | 第26-27页 |
| 3.2 Tyro3-pEGFP-N1和Axl-pEGFP-N1质粒转染RAW264.7小鼠巨噬细胞 | 第27-28页 |
| 3.3 各组细胞上清IL-6、IL-10、IL-33、TNF-α和TLR4含量检测结果 | 第28-31页 |
| 3.3.1 转入Tyro3-pEGFP-N1质粒实验组、pEGFP-N1空质粒组和单独配体组 | 第28-30页 |
| 3.3.2 转入Axl-pEGFP-N1质粒实验组、pEGFP-N1空质粒组和单独配体组 | 第30-31页 |
| 3.4 TYRO3和AXL对Lps刺激巨噬细胞IL-6,MYD88,TLR4和TNF-αmRNA表达的作用 | 第31-33页 |
| 3.4.1 转入Tyro3-pEGFP-N1质粒实验组、pEGFP-N1空质粒组和单独配体组 | 第31-32页 |
| 3.4.2 转入Axl-pEGFP-N1质粒实验组、pEGFP-N1空质粒组和单独配体组 | 第32-33页 |
| 3.5 TYRO3和AXL对LPS刺激巨噬细胞相关蛋白表达的作用 | 第33-35页 |
| 3.5.1 转入Tyro3-pEGFP-N1质粒实验组、pEGFP-N1空质粒组和单独配体组 | 第33-34页 |
| 3.5.2 转入Axl-pEGFP-N1质粒实验组、pEGFP-N1空质粒组和单独配体组 | 第34-35页 |
| 3.6 碳纳米管的纯化氧化 | 第35-37页 |
| 3.7 修饰前后CNT与CS-CNT的电镜图 | 第37-38页 |
| 3.8 修饰前后CS-CNT的溶解性 | 第38-39页 |
| 第4章 讨论 | 第39-43页 |
| 第5章 结论与展望 | 第43-44页 |
| 5.1 结论 | 第43页 |
| 5.2 展望 | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 综述 TAM受体及其配体Gas6/ProS与TLRs号的研究进展 | 第48-53页 |
| 参考文献 | 第51-53页 |
