| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 缩略语/符号说明 | 第9-11页 |
| 前言 | 第11-16页 |
| 研究现状、成果 | 第12-14页 |
| 研究目的、方法 | 第14-16页 |
| 一、对象和方法 | 第16-26页 |
| 1.1 对象 | 第16-19页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第16页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第16-17页 |
| 1.1.3 主要仪器设备 | 第17-18页 |
| 1.1.4 主要溶液 | 第18-19页 |
| 1.2 方法 | 第19-26页 |
| 1.2.1 实验动物分组 | 第19页 |
| 1.2.2 糖尿病大鼠模型的建立 | 第19-20页 |
| 1.2.3 标本采集 | 第20-21页 |
| 1.2.3.1 大鼠血清标本采集 | 第20页 |
| 1.2.3.2 大鼠玻璃体标本采集 | 第20页 |
| 1.2.3.3 大鼠视网膜组织标本采集 | 第20页 |
| 1.2.3.4 大鼠眼球标本采集 | 第20-21页 |
| 1.2.4 大鼠视网膜组织HE染色切片制备 | 第21页 |
| 1.2.4.1 石蜡切片制备 | 第21页 |
| 1.2.4.2 HE染色 | 第21页 |
| 1.2.5 大鼠血清、玻璃体的ELISA检测 | 第21-22页 |
| 1.2.6 大鼠视网膜组织的免疫组织化学染色 | 第22页 |
| 1.2.6.1 免疫组织化学染色步骤 | 第22页 |
| 1.2.6.2 免疫组化分析方法 | 第22页 |
| 1.2.7 大鼠视网膜组织的蛋白质印迹法试验 | 第22-25页 |
| 1.2.7.1 组织中总蛋白的提取 | 第22-23页 |
| 1.2.7.2 Western Blot方法 | 第23-25页 |
| 1.2.8 统计学方法 | 第25-26页 |
| 二、结果 | 第26-36页 |
| 2.1 DM大鼠模型评价 | 第26-27页 |
| 2.1.1 各组大鼠体重及血糖情况 | 第26页 |
| 2.1.2 大鼠视网膜组织HE染色切片 | 第26-27页 |
| 2.2 大鼠血清VEGI、VEGF、TNF-α和IL-1β浓度 | 第27-28页 |
| 2.3 大鼠玻璃体VEGI、VEGF、TNF-α和IL-1β浓度 | 第28-29页 |
| 2.4 大鼠视网膜组织VEGI、VEGF、TNF-α和IL-1β免疫组织化学染色 | 第29-34页 |
| 2.5 大鼠视网膜组织VEGI、VEGF和VEGFR-2蛋白表达检测结果 | 第34-36页 |
| 三、讨论 | 第36-42页 |
| 3.1 DR大鼠模型制备 | 第36页 |
| 3.2 DR大鼠模型的检测 | 第36-37页 |
| 3.3 炎症因子在DR中的作用 | 第37页 |
| 3.4 VEGI、VEGF、TNF-α和IL-1β在DM大鼠血清中的浓度变化 | 第37-38页 |
| 3.5 VEGI、VEGF、TNF-α和IL-1β在DM大鼠玻璃体中的浓度变化 | 第38页 |
| 3.6 VEGI、VEGF、TNF-α和IL-1β在DM大鼠视网膜中的浓度变化 | 第38-39页 |
| 3.7 VEGI在DR中对内皮细胞的作用 | 第39-41页 |
| 3.8 展望 | 第41-42页 |
| 四、结论 | 第42-43页 |
| 五、论文创新点 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-49页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第49-50页 |
| 综述 | 第50-64页 |
| 综述参考文献 | 第59-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
