摘要 | 第6-8页 |
Abstract | 第8-9页 |
第一章 绪论 | 第10-12页 |
第二章 材料与方法 | 第12-30页 |
2.1 研究资料及仪器设备 | 第12-18页 |
2.1.1 研究对象 | 第12页 |
2.1.2 主要仪器 | 第12-13页 |
2.1.3 实验器材和试剂 | 第13-14页 |
2.1.4 主要试剂配制 | 第14-18页 |
2.2 实验方法与流程 | 第18-29页 |
2.2.1 暴露TCDD诱导的小鼠肝纤维化模型 | 第18页 |
2.2.2 细胞培养与处理 | 第18-19页 |
2.2.3 制作肝组织冰冻切片以及镜下观察 | 第19-22页 |
2.2.3.1 灌注和肝组织冰冻切片标本的取材 | 第19页 |
2.2.3.2 天狼猩红染色 | 第19-20页 |
2.2.3.3 免疫组织化学染色 | 第20页 |
2.2.3.4 H&E染色 | 第20-21页 |
2.2.3.5 免疫组织荧光染色 | 第21-22页 |
2.2.4 WesternBlot | 第22-25页 |
2.2.4.1 组织蛋白提取 | 第22页 |
2.2.4.2 贴壁细胞的收集以及细胞蛋白制备 | 第22-23页 |
2.2.4.3 SDS-PAGE凝胶电泳实验 | 第23-24页 |
2.2.4.4 转膜 | 第24页 |
2.2.4.5 蛋白免疫印迹检测 | 第24-25页 |
2.2.5 逆转录多聚酶链反应(RT-PCR) | 第25-26页 |
2.2.5.1 引物序列 | 第25页 |
2.2.5.2 逆转录反应 | 第25-26页 |
2.2.5.3 PCR反应 | 第26页 |
2.2.6 细胞免疫荧光染色 | 第26-27页 |
2.2.7 ELISA试剂盒检测IL-6和TNF-α的释放 | 第27-28页 |
2.2.7.1 准备材料 | 第27-28页 |
2.2.7.2 具体实验步骤 | 第28页 |
2.2.8 核浆分离方法 | 第28-29页 |
2.3 统计学分析 | 第29-30页 |
第三章 结果 | 第30-39页 |
3.1 TCDD暴露对小鼠肝纤维化的影响 | 第30-31页 |
3.2 TCDD暴露诱导HSC活化标记物α-SMA 和纤维化标志物Coll1A1 表达增加 | 第31-34页 |
3.3 TCDD诱导肝纤维化通过活化Akt信号通路 | 第34-35页 |
3.4 TCDD处理对Akt/NF-κB信号通路及其炎性反应的影响 | 第35-39页 |
第四章 讨论 | 第39-41页 |
第五章 结论 | 第41-42页 |
参考文献 | 第42-45页 |
英文缩写词表 | 第45-47页 |
综述 | 第47-58页 |
综述参考文献 | 第54-58页 |
A:在攻读硕士学位期间公开发表的论文 | 第58页 |
B:所参加的项目 | 第58-59页 |
致谢 | 第59页 |