| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 英汉縮略语名词对照 | 第10-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-16页 |
| 第二章 实验材料 | 第16-21页 |
| 2.1 主要实验材料 | 第16页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第16页 |
| 2.1.2 菌种 | 第16页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第16页 |
| 2.2 实验试剂 | 第16-17页 |
| 2.3 实验耗材和仪器 | 第17-19页 |
| 2.3.1 实验耗材 | 第17-18页 |
| 2.3.2 实验仪器 | 第18-19页 |
| 2.4 培养基和溶液的配制 | 第19-21页 |
| 2.4.1 培养基的配制 | 第19-20页 |
| 2.4.2 溶液的配制 | 第20-21页 |
| 第三章 实验方法 | 第21-34页 |
| 3.1 质粒DNA的制备 | 第21-22页 |
| 3.1.1 E.coli的菌种复苏和扩大培养 | 第21页 |
| 3.1.2 质粒DNA的提取 | 第21-22页 |
| 3.2 黑色素瘤B16细胞的培养 | 第22-24页 |
| 3.2.1 B16细胞的复苏 | 第22页 |
| 3.2.2 细胞的换液与传代 | 第22-23页 |
| 3.2.3 B16细胞计数方法 | 第23页 |
| 3.2.4 细胞冻存 | 第23-24页 |
| 3.3 小鼠荷瘤模型的建立 | 第24页 |
| 3.4 石蜡切片的制作与HE染色 | 第24-25页 |
| 3.4.1 石蜡切片的制作 | 第24页 |
| 3.4.2 HE染色 | 第24-25页 |
| 3.5 RT-PCR(逆转录-聚合酶链式反应)法鉴定IL-24,IL-12,Bax,Bcl-2,VEGF的表达 | 第25-30页 |
| 3.5.1 肿瘤组织中的总RNA提取 | 第25-26页 |
| 3.5.2 RNA浓度测定 | 第26页 |
| 3.5.3 逆转录合成cDNA | 第26-27页 |
| 3.5.4 引物设计 | 第27-28页 |
| 3.5.5 PCR扩增反应 | 第28-30页 |
| 3.5.6 PCR扩增产物的检测 | 第30页 |
| 3.6 Western Blot检测Bax,Bcl-2,VEGF,caspase-3,caspase-12蛋白的表达 | 第30-33页 |
| 3.6.1 收集蛋白样本 | 第30-31页 |
| 3.6.2 SDS-PAGE(聚丙烯酰胺凝胶)电泳 | 第31-33页 |
| 3.7 统计学处理 | 第33-34页 |
| 第四章 实验结果 | 第34-45页 |
| 4.1 小鼠黑色素瘤荷瘤模型成功建立 | 第34页 |
| 4.2 基因治疗后对小鼠荷瘤生长的抑制作用 | 第34-35页 |
| 4.3 HE染色各组肿瘤组织形态学观察 | 第35-36页 |
| 4.4 RT-PCR检测肿瘤组织中IL-24,IL-12,Bax,Bcl-2,VEGF mRNA的表达 | 第36-40页 |
| 4.4.1 验证IL-24和IL-12在移植瘤中的成功表达 | 第36-37页 |
| 4.4.2 Bax,Bcl-2和VEGF在移植瘤中的表达 | 第37-40页 |
| 4.5 Western Blot检测肿瘤组织中Bax,Bcl-2,VEGF, Caspase-3,Caspase-12蛋白的表达 | 第40-45页 |
| 第五章 讨论 | 第45-48页 |
| 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 综述 | 第53-61页 |
| 参考文献 | 第59-61页 |
