摘要 | 第5-7页 |
abstract | 第7-9页 |
第一章 绪论 | 第13-33页 |
1.1 层层自组装技术概述 | 第13-16页 |
1.1.1 层层自组装技术的起源与发展 | 第14-16页 |
1.2 各种刺激性响应层层自组装多层膜 | 第16-21页 |
1.2.1 pH响应性LBL自组装多层膜 | 第16-17页 |
1.2.2 温度响应性LBL自组装多层膜 | 第17-18页 |
1.2.3 光响应性LBL自组装多层膜 | 第18-21页 |
1.3 层层自组装技术在药物控释方向上的应用 | 第21-28页 |
1.3.1 成膜材料自身降解导致药物释放 | 第23-24页 |
1.3.2 通过外加材料控制药物释放速率 | 第24-26页 |
1.3.3 外部刺激引起的药物释放 | 第26-28页 |
1.4 与微针相结合的层层自组装应用 | 第28-30页 |
1.5 论文研究的目的及意义 | 第30-31页 |
1.6 课题思路和研究内容 | 第31-33页 |
第二章 pH响应型微针的制备以及在细胞毒性实验上的初步应用 | 第33-47页 |
2.1 前言 | 第33-34页 |
2.2 材料与方法 | 第34-41页 |
2.2.1 实验试剂和耗材 | 第34-35页 |
2.2.2 实验仪器 | 第35-36页 |
2.2.3 微针模具的制备 | 第36页 |
2.2.4 PLA微针的制备 | 第36-37页 |
2.2.5 阿霉素胶束的制备 | 第37页 |
2.2.6 透析袋的前处理过程 | 第37页 |
2.2.7 阿霉素胶束载药率包封率的测定 | 第37-38页 |
2.2.8 在微针上层层自组装阿霉素胶束 | 第38页 |
2.2.9 阿霉素胶束粒径的测定 | 第38页 |
2.2.10 载药微针释放动力学测定 | 第38-39页 |
2.2.11 人源诱导多能干细胞(hiPSC)的培养与传代 | 第39页 |
2.2.12 hiPSC向心肌细胞的定向分化 | 第39-40页 |
2.2.13 将载药微针用于心肌毒性评价 | 第40-41页 |
2.3 结果与讨论 | 第41-46页 |
2.3.1 阿霉素胶束的形态粒径 | 第41-42页 |
2.3.2 微针上负载阿霉素胶束的表征 | 第42页 |
2.3.3 微针上载药释放动力学研究 | 第42-43页 |
2.3.4 人源诱导多能干细胞的培养 | 第43-44页 |
2.3.5 人源诱导多能干细胞向心肌细胞的分化 | 第44-45页 |
2.3.6 载药微针作用在心肌细胞 | 第45-46页 |
2.4 本章小结 | 第46-47页 |
第三章 基于PDMS膜的近红外光响应多层膜用于细胞粘附与释放 | 第47-63页 |
3.1 前言 | 第47-49页 |
3.2 材料与方法 | 第49-57页 |
3.2.1 实验试剂和耗材 | 第49-50页 |
3.2.2 实验仪器 | 第50-51页 |
3.2.3 石英片上上转换的平铺 | 第51-52页 |
3.2.4 底部平铺上转换的PDMS薄膜的制备 | 第52页 |
3.2.5 PDMS/UCNPs复合膜表面处理 | 第52-53页 |
3.2.6 聚电解质多层膜的构筑 | 第53-54页 |
3.2.7 图案法验证多层膜光控释放能力 | 第54页 |
3.2.8 验证载药复合膜光控释放能力 | 第54-55页 |
3.2.9 MCF-7的培养 | 第55页 |
3.2.10 在PDMS/UCNPs复合膜组装anti-EpCAM | 第55-56页 |
3.2.11 捕获MCF- | 第56页 |
3.2.12 MCF-7的释放 | 第56-57页 |
3.2.13 对释放下的MCF-7进行再培养 | 第57页 |
3.3 结果与讨论 | 第57-62页 |
3.3.0 上转换表征 | 第57-58页 |
3.3.1 PDMS/UCNPs复合膜的表征 | 第58-59页 |
3.3.2 在PDMS/UCNPs复合膜上构建偶氮苯多层膜的表征 | 第59页 |
3.3.3 光控释放模型药物图案化实验 | 第59-60页 |
3.3.4 MCF-7捕获情况表征 | 第60-61页 |
3.3.5 MCF-7释放情况表征 | 第61页 |
3.3.6 对释放下来的细胞进行活性分析 | 第61-62页 |
3.4 本章小结 | 第62-63页 |
结论 | 第63-64页 |
致谢 | 第64-66页 |
参考文献 | 第66-74页 |
攻读硕士学位期间发表的论文及科研成果 | 第74页 |