| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩写表 | 第12-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-23页 |
| 1.1 研究背景 | 第13-14页 |
| 1.1.1 黄曲霉毒素简介 | 第13-14页 |
| 1.1.2 伏马毒素简介 | 第14页 |
| 1.1.3 赭曲霉毒素简介 | 第14页 |
| 1.2 真菌毒素检测方法 | 第14-16页 |
| 1.2.1 理化检测法 | 第14-15页 |
| 1.2.2 免疫化学检测法 | 第15页 |
| 1.2.3 其他方法 | 第15-16页 |
| 1.3 光子晶体材料简介 | 第16-18页 |
| 1.3.1 光子晶体概述及特征 | 第16页 |
| 1.3.2 光子晶体的分类 | 第16-17页 |
| 1.3.3 光子晶体的应用 | 第17-18页 |
| 1.4 化学发光免疫分析技术 | 第18-20页 |
| 1.4.1 化学发光免疫分析技术的基本原理 | 第18页 |
| 1.4.2 化学发光免疫分析技术的分类 | 第18-19页 |
| 1.4.3 化学发光免疫分析技术在食品安全检测中的应用 | 第19-20页 |
| 1.5 目前研究进展 | 第20-22页 |
| 1.5.1 酶联免疫法 | 第20页 |
| 1.5.2 免疫传感器法 | 第20页 |
| 1.5.3 免疫芯片分析法 | 第20-21页 |
| 1.5.4 分子印迹技术 | 第21页 |
| 1.5.5 本实验室的研究 | 第21-22页 |
| 1.6 本课题研究的内容及优势 | 第22-23页 |
| 1.6.1 本课题研究的内容 | 第22页 |
| 1.6.2 本课题的研究优势 | 第22-23页 |
| 第2章 水凝胶光子晶体微球(HPBs)的制备及微球表面化学修饰的研究 | 第23-34页 |
| 2.1 单分散纳米二氧化硅微球的制备 | 第23-24页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第23页 |
| 2.1.2 试验仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.3 试验方法 | 第24页 |
| 2.2 水凝胶溶液的制备 | 第24-26页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第24页 |
| 2.2.2 试验方法 | 第24-25页 |
| 2.2.3 试验结果 | 第25-26页 |
| 2.3 水凝胶光子晶体微球自组装 | 第26-31页 |
| 2.3.1 试验材料 | 第27页 |
| 2.3.2 试验仪器 | 第27页 |
| 2.3.3 试验方法 | 第27-28页 |
| 2.3.4 表征方法 | 第28页 |
| 2.3.5 结果与分析 | 第28-31页 |
| 2.4 水凝胶光子晶体微球的表面化学修饰的研究 | 第31-33页 |
| 2.4.1 试验材料 | 第31页 |
| 2.4.2 试验仪器 | 第31页 |
| 2.4.3 试验方法 | 第31-32页 |
| 2.4.4 SiO_2光子晶体微球和水凝胶光子晶体微球化学发光信号对比 | 第32-33页 |
| 2.5 本章总结 | 第33-34页 |
| 第3章 基于水凝胶光子晶体微球检测农产品中伏马毒素B_1 | 第34-44页 |
| 3.1 试验材料及仪器 | 第35-36页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第35页 |
| 3.1.2 试验仪器 | 第35-36页 |
| 3.1.3 试剂配制 | 第36页 |
| 3.2 反应条件的优化 | 第36-37页 |
| 3.2.1 包被抗原pH值的优化 | 第36页 |
| 3.2.2 包被抗原浓度的优化 | 第36页 |
| 3.2.3 一抗稀释比率的优化 | 第36页 |
| 3.2.4 二抗稀释比率的优化 | 第36-37页 |
| 3.3 谷物中黄曲霉毒素B_1的检测 | 第37页 |
| 3.3.1 标准曲线制作 | 第37页 |
| 3.3.2 特异性分析 | 第37页 |
| 3.3.3 回收率测定 | 第37页 |
| 3.4 结果与分析 | 第37-43页 |
| 3.4.1 包被抗原pH值的优化 | 第37-38页 |
| 3.4.2 包被抗原浓度的优化 | 第38-39页 |
| 3.4.3 一抗稀释比率的优化 | 第39页 |
| 3.4.4 二抗稀释比率的优化 | 第39-40页 |
| 3.4.5 标准曲线 | 第40-41页 |
| 3.4.6 特异性分析 | 第41-42页 |
| 3.4.7 回收率测定 | 第42-43页 |
| 3.5 讨论 | 第43页 |
| 3.6 小结 | 第43-44页 |
| 第4章 农产品中真菌毒素的多重检测 | 第44-70页 |
| 4.1 试验材料及仪器 | 第45-46页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第45页 |
| 4.1.2 试验仪器 | 第45-46页 |
| 4.2 条件优化 | 第46页 |
| 4.2.1 包被缓冲液pH及底物反应时间的优化 | 第46页 |
| 4.2.2 包被抗原浓度的优化 | 第46页 |
| 4.2.3 一抗稀释比率的优化 | 第46页 |
| 4.2.4 二抗稀释比率的优化 | 第46页 |
| 4.3 谷物中真菌毒素的多重检测 | 第46-48页 |
| 4.3.1 标准曲线制作 | 第46-47页 |
| 4.3.2 多重特异性分析 | 第47页 |
| 4.3.3 回收率测定 | 第47页 |
| 4.3.4 液相色谱与质谱联用测回收率对比 | 第47-48页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第48-68页 |
| 4.4.1 包被pH值的优化 | 第48-49页 |
| 4.4.2 包被抗原浓度的优化 | 第49-51页 |
| 4.4.3 一抗稀释比率的优化 | 第51-53页 |
| 4.4.4 二抗稀释比率的优化 | 第53-54页 |
| 4.4.5 多重检测标准曲线 | 第54-57页 |
| 4.4.6 特异性分析 | 第57-58页 |
| 4.4.7 FB_1、AFB_1、OTA液相色谱质谱联用分析结果 | 第58-62页 |
| 4.4.8 多重检测回收率测定并与液相色谱质谱联用检测对比 | 第62-64页 |
| 4.4.9 谷物中FB_1、AFB_1和OTA测定并与液相色谱质谱联用检测对比 | 第64-68页 |
| 4.5 结果讨论 | 第68-69页 |
| 4.6 本章小结 | 第69-70页 |
| 全文总结 | 第70-71页 |
| 论文创新点 | 第71-72页 |
| 展望 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-82页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
