| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-13页 |
| 第1章 引言 | 第13-15页 |
| 第2章 综述 | 第15-25页 |
| 2.1. 热休克蛋白 | 第15-16页 |
| 2.1.1 热休克蛋白的发现 | 第15页 |
| 2.1.2 热休克蛋白的分类 | 第15页 |
| 2.1.3 热休克蛋白的主要生物学特征及功能 | 第15-16页 |
| 2.2 热休克蛋白 27（Hsp27） | 第16-21页 |
| 2.2.1 Hsp27 的主要生物学作用 | 第16-18页 |
| 2.2.2 Hsp27 的磷酸化 | 第18-19页 |
| 2.2.3 Hsp27 对于疾病的诊断和治疗的潜力 | 第19-21页 |
| 2.3 H_20_2处理 H_9C_2细胞构建的处于氧化应激条件下的细胞模型 | 第21页 |
| 2.4. 实时荧光定量 PCR（Q-PCR）技术 | 第21-25页 |
| 2.4.1 Q-PCR 技术的原理 | 第22页 |
| 2.4.2 Q-PCR 技术的应用 | 第22-23页 |
| 2.4.3 Q-PCR 技术分析方法 | 第23-25页 |
| 第3章 实验材料及方法 | 第25-31页 |
| 3.1 实验材料 | 第25-26页 |
| 3.1.1 实验主要仪器及设备 | 第25页 |
| 3.1.2 实验主要试剂及试剂盒 | 第25-26页 |
| 3.1.3 主要试剂的配制方法 | 第26页 |
| 3.2 实验方法 | 第26-30页 |
| 3.2.1 细胞的培养 | 第26-27页 |
| 3.2.2 MTT 比色法测细胞凋亡率 | 第27-28页 |
| 3.2.3 RNA 的提取 | 第28页 |
| 3.2.4 逆转录获取 cDNA | 第28-29页 |
| 3.2.5 Q-PCR 法测各组心肌细胞内 Hsp27 mRNA 及 Bax mRNA 表达情况 | 第29-30页 |
| 3.3 统计学处理 | 第30-31页 |
| 第4章 结果 | 第31-36页 |
| 4.1 MTT 结果 | 第31-32页 |
| 4.2 酶标仪测提取 RNA 浓度结果 | 第32-33页 |
| 4.3 Q-PCR 结果 | 第33-36页 |
| 第5章 讨论 | 第36-40页 |
| 第6章 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-46页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47页 |
