| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第12-19页 |
| 1.1 过氧化物酶体 | 第12-13页 |
| 1.1.1 过氧化物酶 | 第12页 |
| 1.1.2 2-Cys Prx蛋白 | 第12-13页 |
| 1.2 一氧化氮与冷信号 | 第13-14页 |
| 1.2.1 一氧化氮 | 第13-14页 |
| 1.2.2 NO与冷信号 | 第14页 |
| 1.3 线粒体与氧化还原特征物质 | 第14-18页 |
| 1.3.1 线粒体 | 第14-15页 |
| 1.3.2 氧化还原特征物质 | 第15-18页 |
| 1.4 冷信号与氧化还原特征物质 | 第18页 |
| 1.5 论文研究内容与意义 | 第18-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-23页 |
| 2.1.1 仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.2 试剂 | 第20页 |
| 2.1.3 主要溶液、缓冲液及培养基 | 第20-21页 |
| 2.1.4 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.5 质粒与菌种 | 第22页 |
| 2.1.6 引物 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-39页 |
| 2.2.1 桃果实2-Cys-Prx基因全长的获取 | 第23-30页 |
| 2.2.2 体外重组2-Cys Prx蛋白 | 第30-33页 |
| 2.2.3 2-Cys Prx基因表达量的检测 | 第33-35页 |
| 2.2.4 桃果实线粒体的提取 | 第35页 |
| 2.2.5 线粒体氧化还原电势的测定 | 第35-37页 |
| 2.2.6 线粒体ADP/ATP的测定 | 第37页 |
| 2.2.7 线粒体内源NO含量的测定 | 第37页 |
| 2.2.8 线粒体GSNOR活性的测定 | 第37-38页 |
| 2.2.9 线粒体总RSNOs含量的测定 | 第38页 |
| 2.2.10 线粒体Mn-SOD活性的测定 | 第38-39页 |
| 2.2.11 统计与分析 | 第39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-54页 |
| 3.1 桃果实2-Cys Prx基因全长的获得及蛋白表达 | 第39-46页 |
| 3.1.1 桃果实2-Cys Prx基因全长的获取 | 第39-41页 |
| 3.1.2 2-Cys Prx基因的生物信息学分析 | 第41-43页 |
| 3.1.3 2-Cys Prx蛋白氨基酸序列同源比对和系统进化分析 | 第43-44页 |
| 3.1.4 2-Cys Prx蛋白表达 | 第44-46页 |
| 3.2 NO与冷信号对2-Cys Prx基因表达量的影响 | 第46页 |
| 3.3 NO与冷信号对桃果实线粒体氧化还原电势的影响 | 第46-50页 |
| 3.3.1 不同处理对桃果实线粒体NAD~+、NADH及NAD~+/NADH比率的影响 | 第46-48页 |
| 3.3.2 不同处理对桃果实线粒体NADP~+、NADPH及NADP~+/NADPH比率的影响 | 第48-50页 |
| 3.4 不同处理对桃果实线粒体ADP/ATP比率的影响 | 第50-51页 |
| 3.5 不同处理对桃果实线粒体NO含量的影响 | 第51页 |
| 3.6 不同处理对桃果实线粒体GSNOR活性的影响 | 第51-52页 |
| 3.7 不同处理对桃果实线粒体亚硝基硫醇活性的影响 | 第52页 |
| 3.8 不同处理对桃果实线粒体Mn-SOD活性的影响 | 第52-54页 |
| 4 讨论 | 第54-58页 |
| 4.1 桃果实2-Cys Prx蛋白的分析及NO对2-Cys Prx基因的调控机理 | 第54-55页 |
| 4.2 NO对桃果实线粒体氧化还原信号关键物质与内源NO的调控作用 | 第55-56页 |
| 4.3 冷信号对桃果实线粒体氧化还原信号关键物质及内源NO的调控作用 | 第56-57页 |
| 4.4 NO与冷信号对线粒体氧化还原信号关键物质及内源NO的调控作用 | 第57-58页 |
| 5 结论 | 第58-59页 |
| 论文的主要创新之处 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 硕士期间论文发表情况 | 第73页 |
