中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
缩略语说明 | 第10-12页 |
前言 | 第12-14页 |
一、SAHA联合顺铂对宫颈癌SiHa细胞的作用 | 第14-28页 |
1.1 对象和方法 | 第14-18页 |
1.1.1 标本来源 | 第14页 |
1.1.2 主要仪器设备 | 第14页 |
1.1.3 主要试剂 | 第14-15页 |
1.1.4 方法 | 第15-18页 |
1.2 结果 | 第18-24页 |
1.2.1 SiHa细胞生长状况及形态学变化 | 第18-19页 |
1.2.2 DDP和SAHA单药对SiHa细胞的增殖的影响 | 第19-20页 |
1.2.3 DDP和SAHA联合作用对SiHa细胞的增殖的影响 | 第20-22页 |
1.2.4 DDP联合SAHA作用于SiHa细胞后细胞周期的变化 | 第22-23页 |
1.2.5 DDP联合SAHA作用于SiHa细胞后细胞凋亡情况 | 第23-24页 |
1.3 讨论 | 第24-27页 |
1.4 小结 | 第27-28页 |
二、SAHA联合X线照射对宫颈癌SiHa细胞的作用 | 第28-35页 |
2.1 对象和方法 | 第28-30页 |
2.1.1 主要设备 | 第28页 |
2.1.2 主要试剂 | 第28页 |
2.1.3 细胞培养 | 第28页 |
2.1.4 细胞复苏冻存 | 第28页 |
2.1.5 MTT法检测SAHA对宫颈癌细胞的增殖抑制作用 | 第28-29页 |
2.1.6 SAHA联合X线照射对Siha细胞作用的检测 | 第29-30页 |
2.2 结果 | 第30-32页 |
2.2.1 SAH对SiHa细胞的抑制作用 | 第30页 |
2.2.2 SAH对SiHa细胞的放射增敏作用 | 第30-32页 |
2.3 讨论 | 第32-34页 |
2.4 小结 | 第34-35页 |
三、SAHA对宫颈癌SiHa细胞的化放疗增敏机制的研究 | 第35-51页 |
3.1 对象和方法 | 第35-43页 |
3.1.1 标本来源 | 第35页 |
3.1.2 主要仪器设备 | 第35页 |
3.1.3 主要试剂 | 第35-36页 |
3.1.4 试剂配制 | 第36-37页 |
3.1.5 细胞总mRNA的提取及浓度和纯度测定 | 第37-38页 |
3.1.6 引物序列设计稀释及逆转录 | 第38页 |
3.1.7 荧光定量RT-PCR扩增 | 第38-39页 |
3.1.8 Western Blot检测SAHA联合DDP细胞P21、Bax的蛋白水平 | 第39-42页 |
3.1.9 Western Blot检测SAHA联合X线照射后Bax和Ku70蛋白的表达 | 第42页 |
3.1.10 统计学分析 | 第42-43页 |
3.2 结果 | 第43-46页 |
3.2.1 SAHA联合DDP作用细胞后p21和Bax的mRNA表达 | 第43页 |
3.2.2 DDP联合SAHA作用于SiHa细胞后P21、Bax蛋白的表达 | 第43-44页 |
3.2.3 SAHA联合X线照射后Bax和Ku70mRNA的表达 | 第44-45页 |
3.2.4 SAHA联合X线照射后Bax和Ku70蛋白的表达 | 第45-46页 |
3.3 讨论 | 第46-50页 |
3.4 小结 | 第50-51页 |
全文结论 | 第51-52页 |
论文创新点 | 第52-53页 |
参考文献 | 第53-59页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第59-60页 |
综述 组蛋白去乙酰化酶抑制的抗肿瘤研究进展 | 第60-82页 |
综述参考文献 | 第73-82页 |
致谢 | 第82页 |