中文摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-10页 |
符号说明 | 第14-16页 |
前言 | 第16-19页 |
一、H_2O_2对MT-1/n K0小鼠脾脏的影响 | 第16-18页 |
研究现状、成果 | 第16-17页 |
研究目的、方法 | 第17-18页 |
二、碘过量对MT-I/IIK0小鼠脾脏的影响 | 第18-19页 |
研究现状、成果 | 第18页 |
研究目的、方法 | 第18-19页 |
一、H_2O_2对MT-Ⅰ/ⅡKO小鼠脾脏的影响 | 第19-41页 |
实验一 不同浓度H_2O_2对MT-Ⅰ/ⅡKO小鼠脾细胞活力的影响 | 第19-28页 |
1.1 对象和方法 | 第19-25页 |
1.1.1 实验动物的来源及饲养繁育 | 第19页 |
1.1.2 主要仪器 | 第19-20页 |
1.1.3 主要试剂 | 第20-21页 |
1.1.4 主要溶液的配制 | 第21-22页 |
1.1.5 脾细胞悬液的制备 | 第22-23页 |
1.1.6 MTT检测细胞活力 | 第23-24页 |
1.1.7 观察线粒体超氧化物的量 | 第24页 |
1.1.8 统计方法 | 第24-25页 |
1.2 结果 | 第25页 |
1.2.1 MTT检测结果 | 第25页 |
1.2.2 观察线粒体超氧化物的量 | 第25页 |
1.3 讨论 | 第25-27页 |
1.4 小结 | 第27-28页 |
实验二 抗氧化剂NAC对MT-Ⅰ/Ⅱ KO小鼠脾细胞氧化应激损伤的影响 | 第28-36页 |
2.1 对象和方法 | 第28-31页 |
2.1.1 主要仪器 | 第28页 |
2.1.2 主要试剂 | 第28页 |
2.1.3 主要溶液的配制 | 第28页 |
2.1.4 MTT检测细胞活力 | 第28-29页 |
2.1.5 细胞损伤检测 | 第29-30页 |
2.1.6 观察线粒体超氧化物的量 | 第30页 |
2.1.7 脾细胞线粒体的制备 | 第30页 |
2.1.8 线粒体肿胀检测 | 第30-31页 |
2.1.9 统计方法 | 第31页 |
2.2 结果 | 第31-33页 |
2.2.1 MTT检测结果 | 第31-32页 |
2.2.2 细胞损伤检测结果 | 第32页 |
2.2.3 观察线粒体超氧化物的量 | 第32页 |
2.2.4 线粒体肿胀检测 | 第32-33页 |
2.3 讨论 | 第33-35页 |
2.4 小结 | 第35-36页 |
实验三 SOD抑制剂DETC对MT-Ⅰ/Ⅱ KO小鼠脾细胞氧化应激损伤的影响 | 第36-41页 |
3.1 对象和方法 | 第36页 |
3.1.1 主要仪器 | 第36页 |
3.1.2 主要试剂 | 第36页 |
3.1.3 主要溶液的配制 | 第36页 |
3.1.4 MTT检测细胞活力 | 第36页 |
3.1.5 细胞损伤检测 | 第36页 |
3.1.6 观察线粒体超氧化物的量 | 第36页 |
3.1.7 线粒体肿胀检测 | 第36页 |
3.1.8 统计方法 | 第36页 |
3.2 结果 | 第36-38页 |
3.2.1 MTT检测结果 | 第36-37页 |
3.2.2 细胞损伤检测结果 | 第37-38页 |
3.2.3 观察线粒体超氧化物的量 | 第38页 |
3.2.4 线粒体肿胀检测 | 第38页 |
3.3 讨论 | 第38-40页 |
3.4 小结 | 第40-41页 |
二、碘过量对MT-Ⅰ/Ⅱ KO小鼠脾脏的影响 | 第41-46页 |
1 对象和方法 | 第41-42页 |
1.1 实验动物的来源、饲养及繁育 | 第41页 |
1.2 主要仪器 | 第41页 |
1.3 主要试剂 | 第41页 |
1.4 主要溶液的配制 | 第41页 |
1.5 动物模型的建立及分组 | 第41-42页 |
1.6 取材和标本的制备 | 第42页 |
1.7 HE化学染色 | 第42页 |
1.8 统计方法 | 第42页 |
2 结果 | 第42-43页 |
2.1 脾脏的脏体比 | 第42-43页 |
2.2 HE染色 | 第43页 |
3 讨论 | 第43-45页 |
4 小结 | 第45-46页 |
结论 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-54页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第54-55页 |
附录 | 第55-59页 |
综述 金属硫蛋白在多器官中的抗氧化作用 | 第59-73页 |
综述参考文献 | 第66-73页 |
致谢 | 第73页 |