| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-15页 |
| 第一章 农杆菌介导短柄草遗传转化体系的建立 | 第15-48页 |
| 1. 文献综述 | 第15-30页 |
| ·农杆菌转化机理与其转基因技术研究 | 第15-18页 |
| ·农杆菌介导遗传转化的分子机制 | 第15-18页 |
| ·农杆菌附着在寄主植物表面和开始识别 | 第16页 |
| ·农杆菌通过VirA/VirG 这两个复合体的信号转导系统接收植物的特殊信号 | 第16页 |
| ·农杆菌vir 基因区被激活 | 第16页 |
| ·容易进行灵活复制的T-DNA 被VirD1/VirD2 激活 | 第16-17页 |
| ·VirD2-DNA 以未成熟复合体形式向植物细胞传递 | 第17页 |
| ·进入植物细胞质中的复合体逐渐成熟 | 第17页 |
| ·成熟的复合体从植物细胞质进入细胞核 | 第17页 |
| ·进入细胞核的T-DNA 开始寻找整合位点 | 第17-18页 |
| ·T-DNA 去除起保护作用的蛋白 | 第18页 |
| ·T-DNA 整合进寄主细胞的染色体组中 | 第18页 |
| ·农杆菌介导单子叶植物遗传转化研究 | 第18-19页 |
| ·农杆菌介导的其它禾谷类作物的遗传转化研究进展 | 第19-20页 |
| ·农杆菌介导遗传转化效率的重要影响因素 | 第20-23页 |
| ·基因型 | 第20页 |
| ·外植体 | 第20页 |
| ·农杆菌菌株和载体 | 第20页 |
| ·预处理、接种和共培养条件 | 第20-22页 |
| ·筛选标记基因 | 第22-23页 |
| ·短柄草（Brachypodium diatachyon）:禾本科作物功能基因组研究的新型模式植物 | 第23-28页 |
| ·短柄草生物学特性研究 | 第23-24页 |
| ·短柄草分子生物学研究 | 第24页 |
| ·VIGS 在短柄草功能基因组研究中的应用 | 第24-25页 |
| ·VIGS 的分子机制 | 第24-25页 |
| ·VIGS 在短柄草功能基因组研究中的首次应用 | 第25页 |
| ·短柄草—未来可再生的生物能源 | 第25页 |
| ·短柄草组织培养研究 | 第25-26页 |
| ·短柄草遗传转化研究 | 第26-28页 |
| ·短柄草应用前景 | 第28页 |
| ·本试验研究的切入点和目的意义 | 第28-30页 |
| ·本试验研究的切入点 | 第28-29页 |
| ·本试验研究的目的意义 | 第29-30页 |
| 2. 材料与方法 | 第30-35页 |
| ·试验材料 | 第30页 |
| ·植物材料 | 第30页 |
| ·农杆菌菌株和载体 | 第30页 |
| ·试验方法 | 第30-35页 |
| ·短柄草短柄草未成熟胚愈伤组织诱导及高频再生体系的建立 | 第30-31页 |
| ·短柄草生长条件 | 第30页 |
| ·材料的消毒预处理 | 第30-31页 |
| ·培养基的选择 | 第31页 |
| ·不同碳源对愈伤组织形成的影响 | 第31页 |
| ·胚性愈伤组织的形成和继代 | 第31页 |
| ·植株再生 | 第31页 |
| ·农杆菌介导短柄草ABR 6 遗传转化体系的建立 | 第31-35页 |
| ·电转化法农杆菌感受态的制备 | 第31-32页 |
| ·pCAMBIA 1302 质粒电击转化农杆菌AGL1 | 第32页 |
| ·质粒转化农杆菌的PCR 检测 | 第32-33页 |
| ·潮霉素筛选浓度的选择 | 第33页 |
| ·根癌农杆菌侵染愈伤组织的浓度 | 第33页 |
| ·农杆菌介导的胚性愈伤组织转化和再生 | 第33页 |
| ·转基因植株DNA 提取及PCR 检测 | 第33-34页 |
| ·mGFP5*的荧光显微镜观察 | 第34-35页 |
| 3. 结果与分析 | 第35-44页 |
| ·二倍体短柄草ABR 6 组培和再生体系的优化和建立 | 第35-39页 |
| ·不同诱导培养基上愈伤组织出愈率 | 第35页 |
| ·不同碳源下愈伤组织的形成 | 第35-36页 |
| ·不同浓度激素组合下的胚性愈伤组织 | 第36页 |
| ·KT、BA、IBA 或NAA 对短柄草分化的影响 | 第36-38页 |
| ·IAA 对短柄草生根的影响 | 第38-39页 |
| ·农杆菌介导的ABR 6 遗传转化体系的建立 | 第39-44页 |
| ·植物表达载体转化农杆菌的PCR 检测 | 第39页 |
| ·不同潮霉素浓度对胚性愈伤组织影响 | 第39-40页 |
| ·根癌农杆菌浓度对转化效率的影响 | 第40页 |
| ·转基因植株PCR 检测结果 | 第40-41页 |
| ·m GFP5*的荧光显微镜观察结果 | 第41-44页 |
| 4. 讨论 | 第44-47页 |
| ·短柄草组织培养和植株再生条件的优化 | 第44-45页 |
| ·短柄草转化条件的优化 | 第45-47页 |
| 5. 结论 | 第47-48页 |
| 第二章 小麦TaOZR 基因的克隆和特征分析 | 第48-63页 |
| 1. 文献综述 | 第48-53页 |
| ·臭氧诱导植物HR 和PCD 研究 | 第48-51页 |
| ·枯斑的形成和扩展 | 第48-49页 |
| ·AOS 和SA：细胞死亡的正调控因子 | 第49页 |
| ·茉莉酸（JA）：细胞死亡的调控因子 | 第49-50页 |
| ·乙烯（ET）：参与细胞衰老或HR 信号途径 | 第50页 |
| ·植物细胞的复杂信号网络 | 第50-51页 |
| ·小麦条锈病的病原、流行和传播 | 第51页 |
| ·AOS 在小麦与条锈菌互作中的研究 | 第51-52页 |
| ·本试验研究的切入点和目的意义 | 第52-53页 |
| 2. 试验材料与方法 | 第53-56页 |
| ·试验材料 | 第53页 |
| ·试验方法 | 第53-56页 |
| ·总RNA 的提取和cDNA 的合成 | 第53-54页 |
| ·总RNA 提取 | 第53-54页 |
| ·RNA 经反转录合成cDNA 第一链的步骤为 | 第54页 |
| ·TaOZR 全长cDNA 的克隆 | 第54页 |
| ·TaOZR 序列分析 | 第54页 |
| ·采用实时荧光定量PCR（qRT-PCR）分析 | 第54-56页 |
| 3. 结果与分析 | 第56-60页 |
| ·TaOZR 全长cDNA 的克隆和序列分析 | 第56-58页 |
| ·TaOZR 诱导表达分析 | 第58-60页 |
| 4. 讨论 | 第60-62页 |
| 5. 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-75页 |
| 附录1 | 第75-76页 |
| 附录2 | 第76-78页 |
| 缩略词 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 作者简介 | 第80页 |
