| 中英文缩写词对照 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-12页 |
| Abstract | 第12-15页 |
| 1 前言 | 第16-18页 |
| 2 实验材料 | 第18-23页 |
| 2.1 实验动物和细胞 | 第18页 |
| 2.2 人肝组织样本 | 第18页 |
| 2.3 主要药品与试剂 | 第18-19页 |
| 2.4 仪器与设备 | 第19-20页 |
| 2.5 实验用试剂的配制 | 第20-22页 |
| 2.6 图像分析软件 | 第22-23页 |
| 3 实验方法 | 第23-33页 |
| 3.1 小鼠肝纤维化模型及肝纤维化逆转模型的建立 | 第23页 |
| 3.2 细胞培养 | 第23页 |
| 3.3 小鼠肝组织病理学检测 | 第23-24页 |
| 3.4 免疫组织化学检测(IHC) | 第24-25页 |
| 3.5 小鼠肝脏组织总RNA的提取及cDNA的合成 | 第25-26页 |
| 3.6 实时荧光定量PCR(Real-time quantitative PCR,RT-qPCR) | 第26-27页 |
| 3.7 Western Blot实验 | 第27-30页 |
| 3.8 小干扰RNA转染实验(HDAC2-siRNA转染) | 第30-31页 |
| 3.9 细胞周期检测 | 第31-32页 |
| 3.10 统计学处理 | 第32-33页 |
| 4 实验结果 | 第33-46页 |
| 4.1 CCl_4诱导的小鼠肝纤维化模型和小鼠肝纤维化自然逆转模型的建立 | 第33-36页 |
| 4.2 在小鼠肝纤维化和小鼠肝纤维化逆转组织中Class Ⅰ，Ⅱ andⅣ HDACs的mRNA表达水平分析 | 第36-39页 |
| 4.3 CCl_4诱导的小鼠肝纤维化组织和小鼠肝纤维化逆转组织中HDAC2蛋白的表达分析以及在人肝组织中的表达分析 | 第39-41页 |
| 4.4 TGF-β1和MDI诱导的HSC-T6细胞中HDAC2的表达分析 | 第41-43页 |
| 4.5 抑制的HDAC2表达对TGF-β1诱导的HSC-T6细胞活化的影响以及其部分机制研究 | 第43-46页 |
| 5 讨论 | 第46-50页 |
| 6 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-56页 |
| 附录 | 第56-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 综述 Epigenetic modifications by histone deacetylases:biologicalimplications in alcoholic liver disease | 第59-79页 |
| References | 第72-79页 |
| 附件 | 第79页 |
