| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 英文缩略表 | 第9-10页 |
| 第1章 绪论 | 第10-21页 |
| 1.1 马腺疫的研究概况 | 第10-13页 |
| 1.1.1 马腺疫对马属动物的危害 | 第10页 |
| 1.1.2 马腺疫的致病因素 | 第10-12页 |
| 1.1.3 马腺疫的流行情况 | 第12-13页 |
| 1.2 Toll样受体信号通路 | 第13-17页 |
| 1.2.1 Toll样受体 | 第13-15页 |
| 1.2.2 依赖MyD88信号通路/不依赖MyD88信号通路 | 第15-16页 |
| 1.2.3 Toll样受体信号通路中细胞因子的分泌 | 第16-17页 |
| 1.3 巨噬细胞和树突状细胞在链球菌免疫中的作用 | 第17-19页 |
| 1.3.1 巨噬细胞的生物学特性 | 第17页 |
| 1.3.2 树突状细胞的生物学特性 | 第17-18页 |
| 1.3.3 巨噬细胞和树突状细胞与链球菌之间的相互作用 | 第18-19页 |
| 1.4 研究目的及意义 | 第19-21页 |
| 第2章 马链球菌感染对RAW264.7 细胞TLR1、TLR2、TLR6、MyD88及细胞因子mRNA表达的影响 | 第21-35页 |
| 2.1 材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 菌种和细胞株 | 第21-22页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第22页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第22页 |
| 2.2 方法 | 第22-28页 |
| 2.2.1 引物设计与合成 | 第22-23页 |
| 2.2.2 RAW264.7 细胞的培养 | 第23页 |
| 2.2.3 细胞总RNA的提取 | 第23-24页 |
| 2.2.4 cDNA的制备 | 第24页 |
| 2.2.5 阳性质粒的构建 | 第24-27页 |
| 2.2.6 熔解曲线和标准曲线的制备 | 第27页 |
| 2.2.7 RAW264.7 细胞的S.equi感染 | 第27页 |
| 2.2.8 目的基因mRNA表达水平的检测 | 第27-28页 |
| 2.2.9 统计学分析 | 第28页 |
| 2.3 结果 | 第28-32页 |
| 2.3.1 阳性质粒的鉴定 | 第28页 |
| 2.3.2 目的基因的熔解曲线和标准曲线 | 第28-31页 |
| 2.3.3 S.equi的感染对RAW264.7 细胞TLR1、TLR2、TLR6和MyD88 mRNA表达的影响 | 第31页 |
| 2.3.4 S.equi的感染对RAW264.7 细胞细胞因子mRNA表达的影响 | 第31-32页 |
| 2.4 讨论 | 第32-35页 |
| 第3章 TLRs介导的信号通路在马链球菌感染小鼠树突状细胞中的作用 | 第35-46页 |
| 3.1 材料 | 第36-37页 |
| 3.1.1 菌种和细胞株 | 第36页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第36页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第36-37页 |
| 3.2 方法 | 第37-39页 |
| 3.2.1 BMDCs的体外诱导培养 | 第37页 |
| 3.2.2 BMDCs表型的流式细胞分析 | 第37页 |
| 3.2.3 S.equi感染BMDCs | 第37页 |
| 3.2.4 目的基因mRNA表达水平的检测 | 第37-38页 |
| 3.2.5 TLR2在S.equi诱导BMDCs表达表面分子中的作用 | 第38页 |
| 3.2.6 TLR2在S.equi诱导BMDCs分泌细胞因子中的作用 | 第38页 |
| 3.2.7 数据分析 | 第38-39页 |
| 3.3 结果 | 第39-43页 |
| 3.3.1 BMDCs形态及表型的鉴定 | 第39-40页 |
| 3.3.2 S.equi的感染对BMDCs TLR1、TLR2、TLR6和MyD88 mRNA表达的影响 | 第40页 |
| 3.3.3 S.equi的感染对BMDCs IL-1、IL-6、IL-10、IL-12和TNF-α mRNA表达的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.4 TLR2在S.equi诱导BMDCs表达表面分子中的作用 | 第41-42页 |
| 3.3.5 TLR2在S.equi诱导BMDCs分泌细胞因子中的作用 | 第42-43页 |
| 3.4 讨论 | 第43-46页 |
| 第4章 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 作者简介 | 第60页 |
