| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-13页 |
| 第2章 材料和方法 | 第13-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第13-18页 |
| 2.1.1 标本及细胞来源 | 第13页 |
| 2.1.2 主要试剂及耗材 | 第13-14页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第14-15页 |
| 2.1.4 主要试剂配制 | 第15-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-29页 |
| 2.2.1 器材的准备 | 第18页 |
| 2.2.2 hUC-MSCs原代分离培养 | 第18页 |
| 2.2.3 hUC-MSCs和Saos-2 细胞传代培养 | 第18-19页 |
| 2.2.4 流式细胞仪鉴定hUC-MSCs表面标记物 | 第19页 |
| 2.2.5 hUC-MSCs成骨诱导 | 第19-20页 |
| 2.2.6 hUC-MSCs成脂诱导 | 第20页 |
| 2.2.7 hUC-MSCs条件培养基的制备 | 第20页 |
| 2.2.8 细胞计数法和CCK-8 法检测hUC-MSCs-CM对Saos-2 细胞增殖的影响 | 第20-21页 |
| 2.2.9 酶联免疫吸附试验 | 第21页 |
| 2.2.10 Western-blot检测STAT3磷酸化水平 | 第21-24页 |
| 2.2.11 RT-PCR检测增殖相关基因表达水平 | 第24-27页 |
| 2.2.12 细胞计数法和CCK-8 检测IL-6/STAT3信号通路对Saos-2 细胞增殖的影响 | 第27-28页 |
| 2.2.13 Transwell迁移实验 | 第28页 |
| 2.2.14 划痕实验 | 第28-29页 |
| 2.3 统计学处理 | 第29-30页 |
| 第3章 结果 | 第30-40页 |
| 3.1 hUC-MSCs的基本生物学特性 | 第30-32页 |
| 3.2 hUC-MSCs能向骨肉瘤细胞定向迁移 | 第32-33页 |
| 3.3 hUC-MSCs能通过旁分泌途径促进Saos-2 细胞增殖 | 第33-34页 |
| 3.4 hUC-MSCs分泌大量IL-6 | 第34-35页 |
| 3.5 hUC-MSCs通过IL-6 促进Saos-2 细胞增殖 | 第35页 |
| 3.6 hUC-MSCs分泌IL-6 激活Saos-2 细胞STAT3 | 第35-36页 |
| 3.7 hUC-MSCs活化STAT3上调Saos-2 细胞增殖相关基因 | 第36-37页 |
| 3.8 hUC-MSCs活化IL-6/STAT3信号通路促进Saos-2 细胞增殖 | 第37-38页 |
| 3.9 hUC-MSCs激活IL-6/STAT3信号通路促进Saos-2 细胞迁移 | 第38-40页 |
| 第4章 讨论 | 第40-44页 |
| 4.1 hUC-MSCs的优势 | 第40-41页 |
| 4.2 hUC-MSCs分泌IL-6 促进Saos-2 细胞增殖和迁移 | 第41-42页 |
| 4.3 hUC-MSCs通过激活IL-6/STAT3信号通路促进Saos-2 细胞增殖和迁移 | 第42-44页 |
| 第5章 结论与展望 | 第44-45页 |
| 5.1 结论 | 第44页 |
| 5.2 展望 | 第44-45页 |
| 致谢 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第50-51页 |
| 综述 | 第51-60页 |
| 参考文献 | 第57-60页 |
