| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-27页 |
| 1.1 葡萄糖氧化酶 | 第13页 |
| 1.1.1 葡萄糖氧化酶的来源 | 第13页 |
| 1.2 葡萄糖氧化酶的结构及催化机理 | 第13-16页 |
| 1.2.1 葡萄糖氧化酶的结构 | 第13-14页 |
| 1.2.2 葡萄糖氧化酶的作用机理 | 第14页 |
| 1.2.3 葡萄糖氧化酶的应用 | 第14-16页 |
| 1.3 酶的固定化 | 第16-18页 |
| 1.3.1 酶固定化的意义 | 第16-17页 |
| 1.3.2 酶的固定化方法 | 第17-18页 |
| 1.4 金属有机框架(MOF)材料 | 第18-23页 |
| 1.4.1 MOF材料概述 | 第18-19页 |
| 1.4.2 MOF材料的应用 | 第19-21页 |
| 1.4.3 MOF材料固定化酶的研究 | 第21-22页 |
| 1.4.4 磁性MOF材料的研究进展 | 第22-23页 |
| 1.5 葡萄糖酸钠 | 第23-25页 |
| 1.5.1 葡萄糖酸钠的作用与功效 | 第23-24页 |
| 1.5.2 葡萄糖酸钠的制备工艺研究现状 | 第24-25页 |
| 1.6 本课题的主要研究内容与意义 | 第25-27页 |
| 1.6.1 主要研究内容 | 第25-26页 |
| 1.6.2 研究意义 | 第26-27页 |
| 第二章 ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4材料的制备及表征 | 第27-38页 |
| 2.1 实验材料 | 第27-28页 |
| 2.2 主要仪器设备 | 第28页 |
| 2.3 实验方法 | 第28-31页 |
| 2.3.1 纳米Fe_3O_4的制备 | 第28页 |
| 2.3.2 Cellu@Fe_3O_4的制备 | 第28-29页 |
| 2.3.3 ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的制备 | 第29页 |
| 2.3.4 Cellu@Fe_3O_4与ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的表征 | 第29-31页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第31-36页 |
| 2.4.1 Cellu@Fe_3O_4与ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的形貌、尺寸分析 | 第31页 |
| 2.4.2 Cellu@Fe_3O_4与ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的X射线衍射 (XRD) 分析 | 第31-32页 |
| 2.4.3 Cellu@Fe_3O_4与ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的红外光谱 (FTIR) 分析 | 第32-33页 |
| 2.4.4 Cellu@Fe_3O_4与ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的XPS分析 | 第33-34页 |
| 2.4.5 Cellu@Fe_3O_4与ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的热重分析 (TGA) | 第34-35页 |
| 2.4.6 Cellu@Fe_3O_4与ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的震动样品磁强计 (VSM)分析 | 第35-36页 |
| 2.5 本章小结 | 第36-38页 |
| 第三章 ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4固定化葡萄糖氧化酶的研究 | 第38-59页 |
| 3.1 实验材料 | 第38-39页 |
| 3.2 主要仪器设备 | 第39页 |
| 3.3 实验方法 | 第39-43页 |
| 3.3.1 葡萄糖氧化酶蛋白含量的测定 | 第39页 |
| 3.3.2 GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的制备 | 第39-40页 |
| 3.3.3 葡萄糖氧化酶酶活力和固定化酶蛋白负载量的测定方法 | 第40页 |
| 3.3.4 固定化过程中各因素对酶固定化效果的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.5 GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的结构表征 | 第41-42页 |
| 3.3.6 GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的酶学性质的表征 | 第42-43页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第43-57页 |
| 3.4.1 GOx与ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4比值的确定 | 第43-45页 |
| 3.4.2 GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4制备过程中pH的确定 | 第45页 |
| 3.4.3 GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4制备过程中固定化温度的确定 | 第45-46页 |
| 3.4.4 GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4制备过程中固定化时间的确定 | 第46-47页 |
| 3.4.5 GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的催化机理的研究 | 第47-48页 |
| 3.4.6 GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的形貌、尺寸 | 第48-49页 |
| 3.4.7 GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4傅里叶红外光谱分析蛋白二级结构 | 第49-50页 |
| 3.4.8 游离GOx与GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4最适pH的研究 | 第50-51页 |
| 3.4.9 游离GOx与GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4最适温度的研究 | 第51-52页 |
| 3.4.10 游离GOx与GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的pH稳定性 | 第52-53页 |
| 3.4.11 游离GOx与GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的热稳定性 | 第53-54页 |
| 3.4.12 游离GOx与GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的有机溶剂耐受性 | 第54-55页 |
| 3.4.13 游离GOx与GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的动力学参数 | 第55-56页 |
| 3.4.14 游离GOx与GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的储藏稳定性 | 第56-57页 |
| 3.5 本章小结 | 第57-59页 |
| 第四章 GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4催化葡萄糖氧化反应的研究 | 第59-67页 |
| 4.1 实验材料 | 第59页 |
| 4.2 主要仪器设备 | 第59页 |
| 4.3 实验方法 | 第59-61页 |
| 4.3.1 ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4载体材料的制备 | 第59页 |
| 4.3.2 固定化酶GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4的制备 | 第59页 |
| 4.3.3 固定化酶GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4中酶负载量以及酶活的测定方法 | 第59-60页 |
| 4.3.4 高效液相色谱（HPLC）分析 | 第60页 |
| 4.3.5 反应初速度、产物产率的计算 | 第60页 |
| 4.3.6 温度对GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4催化葡萄糖反应的影响 | 第60页 |
| 4.3.7 底物浓度对GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4催化葡萄糖反应的影响 | 第60-61页 |
| 4.3.8 GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4量对其催化葡萄糖反应的影响 | 第61页 |
| 4.3.9 转速对GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4催化葡萄糖反应的影响 | 第61页 |
| 4.3.10 GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4催化葡萄糖反应的操作稳定性 | 第61页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第61-66页 |
| 4.4.1 温度对GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4催化葡萄糖反应的影响 | 第61-62页 |
| 4.4.2 底物浓度对GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4催化葡萄糖氧化反应的影响 | 第62-63页 |
| 4.4.3 GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4酶加量对催化葡萄糖氧化反应的影响 | 第63-64页 |
| 4.4.4 转速对GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4催化葡萄糖氧化反应的影响 | 第64-65页 |
| 4.4.5 GOx-ZIF-8@Cellu@Fe_3O_4催化葡萄糖反应的操作稳定性 | 第65-66页 |
| 4.5 本章小结 | 第66-67页 |
| 结论与展望 | 第67-69页 |
| 结论 | 第67-68页 |
| 创新性 | 第68页 |
| 展望 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-81页 |
| 附录 | 第81-83页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第83-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 附件 | 第86页 |
