| 摘要 | 第3-10页 |
| ABSTRACT | 第10-18页 |
| 前言 | 第22-26页 |
| 第一部分 低温对大鼠脑局灶缺血再灌注损伤的治疗时间窗 | 第26-37页 |
| 1.1 背景 | 第26-27页 |
| 1.2 动物实验伦理学声明 | 第27页 |
| 1.3 实验材料 | 第27-29页 |
| 1.3.1 实验动物 | 第27页 |
| 1.3.2 实验试剂 | 第27-28页 |
| 1.3.3 实验仪器与耗材 | 第28-29页 |
| 1.4 实验方法 | 第29-32页 |
| 1.4.1 实验设计 | 第29-30页 |
| 1.4.2 大脑中动脉梗塞模型 | 第30-31页 |
| 1.4.3 低温诱导、维持与复温 | 第31-32页 |
| 1.4.4 脑片TTC染色 | 第32页 |
| 1.4.5 脑水肿与脑梗死的测量 | 第32页 |
| 1.4.6 统计学方法 | 第32页 |
| 1.5 结果 | 第32-36页 |
| 1.5.1 安全指标监测 | 第32-33页 |
| 1.5.2 低温减轻脑水肿的效果受时间窗限制 | 第33-34页 |
| 1.5.3 低温减少脑梗塞体积的效果受时间窗限制 | 第34-36页 |
| 1.6 讨论 | 第36页 |
| 1.7 结论 | 第36-37页 |
| 第二部分 格列本脲延长低温对大鼠脑局灶缺血再灌注损伤的治疗时间窗 | 第37-57页 |
| 2.1 背景 | 第37-38页 |
| 2.2 实验材料 | 第38-39页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第38页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第38页 |
| 2.2.3 实验仪器与耗材 | 第38-39页 |
| 2.3 实验方法 | 第39-44页 |
| 2.3.1 实验设计 | 第39-40页 |
| 2.3.2 大脑中动脉梗塞模型 | 第40页 |
| 2.3.3 低温诱导、维持与复温 | 第40页 |
| 2.3.4 用药途径 | 第40页 |
| 2.3.5 脑片TTC染色 | 第40-41页 |
| 2.3.6 Evans Blue含量测量 | 第41页 |
| 2.3.7 脑水肿与脑梗死的测量 | 第41页 |
| 2.3.8 神经功能评分检测 | 第41-43页 |
| 2.3.9 统计学方法 | 第43-44页 |
| 2.4 结果 | 第44-54页 |
| 2.4.1 安全性指标监测 | 第44-45页 |
| 2.4.2 格列本脲增强延迟低温治疗脑水肿的效果 | 第45页 |
| 2.4.3 格列本脲增强延迟低温治疗脑梗塞的效果 | 第45-48页 |
| 2.4.4 联用格列本脲后启动低温的有效时间窗 | 第48-51页 |
| 2.4.5 格列本脲增强延迟低温改善MCAO大鼠神经功能的效果 | 第51-52页 |
| 2.4.6 格列本脲联合延迟低温降低血脑屏障通透性 | 第52-54页 |
| 2.5 讨论 | 第54-56页 |
| 2.6 结论 | 第56-57页 |
| 第三部分 格列本脲与延迟低温对SUR1以及炎症因子的影响 | 第57-73页 |
| 3.1 背景 | 第57-58页 |
| 3.2 实验材料 | 第58-63页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第58-59页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第59页 |
| 3.2.3 实验试剂 | 第59-63页 |
| 3.3 实验方法 | 第63-67页 |
| 3.3.1 样本采集与制备 | 第63-64页 |
| 3.3.2 免疫组化法检测SUR1蛋白的表达改变 | 第64-65页 |
| 3.3.3 western blot检测SUR1、TRPM4蛋白表达量的变化 | 第65-67页 |
| 3.3.4 统计学方法 | 第67页 |
| 3.4 结果 | 第67-70页 |
| 3.4.1 免疫组织化学测量SUR1蛋白的表达改变 | 第67-68页 |
| 3.4.2 Western blot测量SUR1蛋白的表达量 | 第68-69页 |
| 3.4.3 Western blot测量COX-2,TNF-α,IL-1β的表达量 | 第69-70页 |
| 3.5 讨论 | 第70-72页 |
| 3.6 结论 | 第72-73页 |
| 总结 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-80页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第80-81页 |
| 硕士研究生期间工作成果 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
