致谢 | 第4-7页 |
摘要 | 第7-8页 |
1 文献综述 | 第8-16页 |
1.1 玉米穗上节间数的研究现状 | 第8-10页 |
1.1.1 玉米抗倒伏的研究进展 | 第8页 |
1.1.2 玉米抗倒伏相关性状的研究进展 | 第8-10页 |
1.2 DNA 分子标记的种类 | 第10-12页 |
1.2.1 RFLP 标记 | 第10-11页 |
1.2.2 RAPD 标记 | 第11页 |
1.2.3 AFLP 标记 | 第11页 |
1.2.4 SSR 标记 | 第11-12页 |
1.3 QTL 分析的原理、方法及应用 | 第12-15页 |
1.3.1 定位群体 | 第12-13页 |
1.3.2 QTL 定位原理、方法 | 第13-15页 |
1.3.3 QTL 在玉米育种中的应用 | 第15页 |
1.3.3.1 新基因资源的发掘 | 第15页 |
1.3.3.2 主效QTL 的分子标记辅助选择策略 | 第15页 |
1.4 玉米QTL 定位的研究进展 | 第15-16页 |
2 本研究的目的与意义 | 第16页 |
3 材料与方法 | 第16-20页 |
3.1 实验材料 | 第16页 |
3.1.1 重组自交系群体的构建 | 第16页 |
3.1.2 “IF_2”群体的组建 | 第16页 |
3.2 田间鉴定 | 第16-17页 |
3.3 数据分析 | 第17页 |
3.4 SSR 分析 | 第17-20页 |
3.4.1 DNA 提取和检测 | 第17-18页 |
3.4.2 SSR 引物及反应体系 | 第18页 |
3.4.2.1 SSR 引物 | 第18页 |
3.4.2.2 PCR 反应体系 | 第18页 |
3.4.2.3 PCR 反应程序 | 第18页 |
3.4.3 扩增产物检测 | 第18-20页 |
3.4.3.1 扩增DNA 变性 | 第18-19页 |
3.4.3.2 电泳准备 | 第19页 |
3.4.3.3 扩增产物的电泳 | 第19页 |
3.4.3.4 扩增产物的银染检测——聚丙烯酰胺凝胶NaOH 染色方法 | 第19-20页 |
3.5 遗传连锁图的构建 | 第20页 |
3.5.1 重组自交系遗传连锁图谱构建 | 第20页 |
3.6 QTL 分析 | 第20页 |
4 结果与分析 | 第20-30页 |
4.1 分子标记连锁图谱的构建 | 第20-24页 |
4.1.1 重组近交系群体的多态性分析 | 第20-21页 |
4.1.2 RIL 群体的基因型分析 | 第21-22页 |
4.1.3 永久F2 群体的基因型分析 | 第22页 |
4.1.4 遗传连锁图的构建 | 第22-24页 |
4.2 玉米穗上节间数的遗传分析 | 第24-30页 |
4.2.1 玉米穗上节间数的表型分析 | 第24-28页 |
4.2.1.1 RIL 群体穗上节间数表型分析 | 第24-25页 |
4.2.1.2 “永久F2”群体穗上节间数的表型分析 | 第25-27页 |
4.2.1.3 玉米穗上节间数的杂种优势分析 | 第27-28页 |
4.2.2 玉米穗上节间数的方差分析 | 第28-29页 |
4.2.2.1 RIL 群体穗上节间数的联合方差分析 | 第28页 |
4.2.2.2 “永久F2”群体穗上节间数的联合方差分析 | 第28-29页 |
4.2.3 玉米穗上节间数的QTL 分析 | 第29-30页 |
5 讨论 | 第30-32页 |
5.1 玉米穗上节间数在抗倒伏育种中的优越性 | 第30页 |
5.2 RIL 群体和“永久F2”群体定位结果存在差异的原因 | 第30-31页 |
5.3 本研究和前人在玉米抗倒伏研究的异同 | 第31-32页 |
参考文献 | 第32-39页 |
英文摘要 | 第39-40页 |