| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略词表 | 第11-12页 |
| 第1章 文献综述 | 第12-21页 |
| 1.1 后发性白内障及其发生机制 | 第12页 |
| 1.1.1 后发性白内障 | 第12页 |
| 1.1.2 后发性白内障的发生机制 | 第12页 |
| 1.2 后发性白内障的治疗 | 第12-15页 |
| 1.2.1 药物防治 PCO | 第12-13页 |
| 1.2.2 基因治疗 | 第13-15页 |
| 1.2.2.1 转基因技术 | 第13-15页 |
| 1.2.2.2 RNA 干扰技术 | 第15页 |
| 1.3 转化生长因子-β与后发性白内障 | 第15-16页 |
| 1.4 氯离子通道与后发性白内障 | 第16-18页 |
| 1.4.1 氯离子通道 | 第16页 |
| 1.4.2 CLC 型氯离子通道的分类 | 第16-17页 |
| 1.4.3 CLC-3 通道 | 第17页 |
| 1.4.4 CLC-3 通道的作用 | 第17-18页 |
| 1.4.4.1 CLC-3 通道对细胞周期的作用 | 第17页 |
| 1.4.4.2 CLC-3 的其他生理作用 | 第17-18页 |
| 1.5 壳聚糖 | 第18-21页 |
| 1.5.1 壳聚糖的医学用途 | 第18-19页 |
| 1.5.2 壳聚糖的吸附作用 | 第19页 |
| 1.5.3 壳聚糖单体的作用 | 第19-21页 |
| 第2章 材料与方法 | 第21-28页 |
| 2.1 材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第21页 |
| 2.1.2 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.3 引物序列 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-27页 |
| 2.2.1 细胞的培养 | 第22-23页 |
| 2.2.1.1 原代细胞的体外培养 | 第22-23页 |
| 2.2.1.2 细胞系的培养 | 第23页 |
| 2.2.2 原代细胞中 CLC-3 的 mRNA 表达检测 | 第23-24页 |
| 2.2.2.1 细胞总 RNA 的提取 | 第23页 |
| 2.2.2.2 总 RNA 逆转录 | 第23-24页 |
| 2.2.2.3 PCR 扩增 | 第24页 |
| 2.2.2.4 PCR 产物电泳 | 第24页 |
| 2.2.3 细胞中CLC-3的蛋白表达检测 | 第24-25页 |
| 2.2.3.1 细胞总蛋白的提取 | 第24-25页 |
| 2.2.3.2 Western BLot 检测 | 第25页 |
| 2.2.4 CLC-3 高表达细胞模型的制备 | 第25页 |
| 2.2.5 细胞转染与壳聚糖处理细胞 | 第25-26页 |
| 2.2.6 细胞 CLC-3 表达量的检测 | 第26页 |
| 2.2.7 细胞增殖的检测 | 第26页 |
| 2.2.8 细胞粘附的检测 | 第26页 |
| 2.2.9 细胞迁移的检测 | 第26-27页 |
| 2.3 统计学处理 | 第27-28页 |
| 第3章 实验结果 | 第28-39页 |
| 3.1 白内障患者 LECs 中 CLC-3 的 mRNA 和蛋白表达 | 第28-29页 |
| 3.2 高表达 CLC-3 的 LECs 模型构建 | 第29-31页 |
| 3.3 低分子壳聚糖对 LECs CLC-3 的表达影响 | 第31-33页 |
| 3.4 低分子壳聚糖对 LECs 增殖的影响 | 第33-35页 |
| 3.5 低分子壳聚糖对 LECs 粘附的影响 | 第35-37页 |
| 3.6 低分子壳聚糖对 LECs 迁移的影响 | 第37-39页 |
| 第4章 讨论 | 第39-41页 |
| 第5章 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-49页 |
| 致谢 | 第49页 |
