摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-6页 |
第一章 绪论 | 第11-26页 |
1.1 肿瘤细胞及其标志物 | 第11-12页 |
1.1.1 肿瘤细胞 | 第11页 |
1.1.2 肿瘤细胞标志物 | 第11-12页 |
1.2 肿瘤细胞及其标志物的分析检测 | 第12-23页 |
1.2.1 信号放大技术 | 第12-15页 |
1.2.1.1 金属纳米粒子 | 第12-14页 |
1.2.1.2 磁性微球 | 第14页 |
1.2.1.3 酶切循环信号放大 | 第14-15页 |
1.2.2 化学发光分析法 | 第15-19页 |
1.2.2.1 化学发光分析方法基本原理及特点 | 第15-16页 |
1.2.2.2 化学发光与流动注射技术的联用 | 第16-18页 |
1.2.2.3 化学发光法在生化分析中的应用现状 | 第18-19页 |
1.2.3 电化学发光分析法 | 第19-22页 |
1.2.3.1 电化学发光分析方法的基本原理及特点 | 第19-21页 |
1.2.3.2 电化学发光实验装置 | 第21页 |
1.2.3.3 电化学发光法在生化分析中的应用现状 | 第21-22页 |
1.2.4 肿瘤细胞及其标志物的其他分析方法 | 第22-23页 |
1.2.4.1 光学显微镜观察 | 第22页 |
1.2.4.2 生物芯片 | 第22页 |
1.2.4.3 双向电泳技术 | 第22-23页 |
1.2.4.4 胶体金层析技术 | 第23页 |
1.2.4.5 蛋白质组学技术 | 第23页 |
1.3 肿瘤细胞及其标志物检测方法的发展趋势 | 第23-24页 |
1.3.1 化学发光分析的发展趋势 | 第23-24页 |
1.3.2 电化学发光分析的发展趋势 | 第24页 |
1.4 立题依据及主要研究内容 | 第24-26页 |
第二章 基于酶切循环信号放大技术电化学发光传感器检测凝血酶的研究 | 第26-36页 |
2.1 前言 | 第26页 |
2.2 实验部分 | 第26-30页 |
2.2.1 仪器与试剂 | 第26-27页 |
2.2.2 实验步骤 | 第27-30页 |
2.2.2.1 金纳米粒子的制备 | 第27页 |
2.2.2.2 联吡啶钌的合成与活化 | 第27-28页 |
2.2.2.3 电化学发光探针的制备 | 第28-29页 |
2.2.2.4 DNA杂交液的制备 | 第29页 |
2.2.2.5 电化学生物传感器的构建 | 第29页 |
2.2.2.6 电化学发光法检测凝血酶 | 第29-30页 |
2.3 结果与讨论 | 第30-35页 |
2.3.1 实验原理 | 第30-31页 |
2.3.2 电极表征 | 第31-32页 |
2.3.3 电化学发光适体传感器的电化学行为 | 第32页 |
2.3.4 实验条件的优化 | 第32-33页 |
2.3.4.1 凝血酶结合时间的优化 | 第32-33页 |
2.3.4.2 pH的优化 | 第33页 |
2.3.5 方法的线性范围与检出限 | 第33-35页 |
2.3.6 电化学发光适体传感器的选择性与稳定性 | 第35页 |
2.4 小结 | 第35-36页 |
第三章 基于酶切循环信号放大技术化学发光传感器检测细胞中的溶菌酶 | 第36-44页 |
3.1 前言 | 第36页 |
3.2 实验部分 | 第36-39页 |
3.2.1 仪器与试剂 | 第36-37页 |
3.2.2 实验步骤 | 第37-39页 |
3.2.2.1 金纳米粒子的制备 | 第37页 |
3.2.2.2 BSA@AuNPs纳米粒子的制备 | 第37页 |
3.2.2.3 ABEI-BSA@AuNPs的制备 | 第37页 |
3.2.2.4 化学发光探针的制备 | 第37-38页 |
3.2.2.5 DNA生物传感器的制备 | 第38页 |
3.2.2.6 溶菌酶的检测 | 第38页 |
3.2.2.7 细胞中溶菌酶的提取 | 第38页 |
3.2.2.8 细胞中溶菌酶的检测 | 第38-39页 |
3.3 结果与讨论 | 第39-43页 |
3.3.1 实验原理 | 第39-40页 |
3.3.2 磁性微球及应用后的TEM表征 | 第40页 |
3.3.3 化学发光适体传感器对溶菌酶的化学发光响应 | 第40页 |
3.3.4 实验条件的优化 | 第40-41页 |
3.3.5 方法的线性范围及检出限 | 第41-42页 |
3.3.6 传感器的选择性 | 第42-43页 |
3.3.7 细胞提取液中溶菌酶的检测 | 第43页 |
3.4 小结 | 第43-44页 |
第四章 基于DNA包埋信号探针技术非标记生物传感器检测肿瘤细胞的研究 | 第44-54页 |
4.1 前言 | 第44页 |
4.2 实验部分 | 第44-47页 |
4.2.1 仪器与试剂 | 第44-45页 |
4.2.2 实验步骤 | 第45-47页 |
4.2.2.1 细胞检测液的制备 | 第45页 |
4.2.2.2 ECL法检测Ramos细胞 | 第45-46页 |
4.2.2.3 CL法检测Ramos细胞 | 第46-47页 |
4.3 结果与讨论 | 第47-53页 |
4.3.1 实验原理 | 第47-48页 |
4.3.2 电极的表征 | 第48-49页 |
4.3.3 实验条件的优化 | 第49-50页 |
4.3.3.1 标记物浓度对电化学发光信号的影响 | 第49页 |
4.3.3.2 细胞作用时间对电化学发光信号的影响 | 第49-50页 |
4.3.3.3 包埋方式的优化 | 第50页 |
4.3.4 细胞工作曲线及方法的检出限 | 第50-52页 |
4.3.5 传感器的选择性 | 第52-53页 |
4.4 小结 | 第53-54页 |
第五章 基于纳米粒子化学发光适体技术检测可卡因的研究 | 第54-62页 |
5.1 前言 | 第54页 |
5.2 实验部分 | 第54-56页 |
5.2.1 仪器与试剂 | 第54-55页 |
5.2.2 实验步骤 | 第55-56页 |
5.2.2.1 化学发光探针的制备 | 第55页 |
5.2.2.2 适体传感器的构建 | 第55页 |
5.2.2.3 Cocaine的测定 | 第55-56页 |
5.3 结果与讨论 | 第56-61页 |
5.3.1 实验原理 | 第56-57页 |
5.3.2 流动注射化学发光流路 | 第57页 |
5.3.3 荧光与TEM表征 | 第57-58页 |
5.3.4 试验条件的选择 | 第58-60页 |
5.3.4.1 pH对对化学发光信号强度的影响 | 第58-59页 |
5.3.4.2 H2_O_2浓度对对化学发光信号的影响 | 第59页 |
5.3.4.3 Co~(2+)浓度对化学发光信号的影响 | 第59-60页 |
5.3.5 检测Cocaine的标准曲线和检出限 | 第60页 |
5.3.6 化学发光适体传感器的选择性和稳定性 | 第60-61页 |
5.4 小结 | 第61-62页 |
结论 | 第62-64页 |
参考文献 | 第64-72页 |
致谢 | 第72-73页 |
攻读学位期间发表及待发表的学术论文目录 | 第73-74页 |