| 缩略词(ABBREVIATION) | 第9-10页 |
| 中文摘要 | 第10-14页 |
| ABSTRACT | 第14-18页 |
| 第一部分 文献综述 | 第19-65页 |
| 第一章 哺乳动物卵子卵泡发生发育与闭锁 | 第19-41页 |
| 1 哺乳动物卵子卵泡发生发育及排卵 | 第19-31页 |
| 1.1 卵巢的结构 | 第19-20页 |
| 1.2 卵子发生 | 第20-21页 |
| 1.3 卵母细胞巢的裂解与原始卵泡形成 | 第21-22页 |
| 1.4 卵泡的生长,发育及排卵 | 第22-31页 |
| 2 哺乳动物卵泡的选择和闭锁 | 第31页 |
| 3 细胞的增殖和死亡 | 第31-32页 |
| 3.1 细胞增殖及死亡概述 | 第31页 |
| 3.2 细胞死亡的类型及特征 | 第31-32页 |
| 4 细胞凋亡与卵泡发育及闭锁 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-41页 |
| 第二章 PARP-1及其相关信号通路参与卵泡发育及闭锁过程的研究进展 | 第41-65页 |
| 1 PARP家族 | 第41-44页 |
| 1.1 PARP家族概述 | 第41页 |
| 1.2 PARP-1酶活性特征 | 第41-42页 |
| 1.3 PARP-1与应激 | 第42-43页 |
| 1.4 PARP与细胞死亡 | 第43-44页 |
| 2 SIRTUINS家族 | 第44-51页 |
| 2.1 Sirtuins家族概述 | 第45页 |
| 2.2 Sirtuins家族各成员主要功能研究进展 | 第45-46页 |
| 2.3 Sirtuins酶活性特征 | 第46-47页 |
| 2.4 Sirtuins与组蛋白乙酰化水平 | 第47-48页 |
| 2.5 Sirtuins与能量代谢 | 第48-49页 |
| 2.6 Sirtuins与细胞死亡 | 第49-51页 |
| 3 一氧化氮合酶(NOS) | 第51-53页 |
| 4 PI3K/AKT/FOXO信号通路 | 第53页 |
| 5 TGF/SMAD信号通路 | 第53-54页 |
| 6 PARP-1与其他蛋白的相互作用 | 第54-57页 |
| 7 本研究的目的和意义 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-65页 |
| 第二部分 试验研究 | 第65-173页 |
| 第三章 猪卵母细胞巢裂解和原始卵泡的形成发育及闭锁过程 | 第65-79页 |
| 摘要 | 第65-67页 |
| 1 材料与方法 | 第67-71页 |
| 1.1 材料 | 第67页 |
| 1.2 试剂 | 第67页 |
| 1.3 仪器 | 第67-68页 |
| 1.4 实验方法 | 第68-71页 |
| 1.5 统计方法 | 第71页 |
| 2 结果 | 第71-75页 |
| 2.1 猪卵巢卵母细胞巢裂解、原始卵泡的形成及卵泡早期发育阶段的特征 | 第71-73页 |
| 2.2 猪各发育阶段卵母细胞巢和各级卵泡比例 | 第73-74页 |
| 2.3 猪卵巢卵泡闭锁过程的特征 | 第74-75页 |
| 3 讨论 | 第75-76页 |
| 3.1 猪卵母细胞巢裂解和原始卵泡的形成及发育 | 第75-76页 |
| 3.2 猪卵巢卵泡的闭锁 | 第76页 |
| 参考文献 | 第76-79页 |
| 第四章 PARP-1的解离信号通路参与猪胚胎、新生及成年时期卵泡形成及发育过程的研究 | 第79-103页 |
| 摘要 | 第79-81页 |
| 1 材料与方法 | 第81-89页 |
| 1.1 材料 | 第81页 |
| 1.2 试剂 | 第81-82页 |
| 1.3 仪器 | 第82页 |
| 1.4 实验方法 | 第82-89页 |
| 2 结果 | 第89-97页 |
| 2.1 新出生、未成熟和性成熟母猪血清内雌二醇和孕酮浓度随着日龄的增长而升高 | 第89页 |
| 2.2 PARP-1解离信号通路存在于未组装的卵母细胞中(卵母细胞巢) | 第89-92页 |
| 2.3 猪卵巢卵泡壁的退化和颗粒细胞的凋亡伴随着caspase-3的活化和PARP-1的解离 | 第92-95页 |
| 2.4 PARP-1和解离型PARP-1在胎儿,新生和成年猪卵巢中的表达模式 | 第95-96页 |
| 2.5 PARP-1解离信号通路参与成年猪卵巢卵泡发育及闭锁过程 | 第96-97页 |
| 3 讨论 | 第97-99页 |
| 参考文献 | 第99-103页 |
| 第五章 PARP-1的解离信号通路参与猪卵泡闭锁过程的机制研究 | 第103-127页 |
| 摘要 | 第103-106页 |
| 1 材料与方法 | 第106-114页 |
| 1.1 材料 | 第106页 |
| 1.2 试剂 | 第106页 |
| 1.3 仪器 | 第106-107页 |
| 1.4 实验方法 | 第107-114页 |
| 2 结果 | 第114-120页 |
| 2.1 所分离有腔卵泡的形态特征均与P4,E2浓度及P/E比率的关系 | 第114-115页 |
| 2.2 猪卵巢卵泡闭锁过程中的PARP-1、解离型PARP-1和caspase-3免疫组织化学定位特征 | 第115-117页 |
| 2.3 PARP-1及caspase-3的活化和PARP-1的解离参与猪卵泡闭锁过程 | 第117-118页 |
| 2.4 无血清培养诱导猪颗粒细胞凋亡 | 第118-119页 |
| 2.5 无血清诱导颗粒细胞凋亡伴随着caspase-3的活化和PARP-1的解离 | 第119-120页 |
| 3 讨论 | 第120-122页 |
| 参考文献 | 第122-127页 |
| 第六章 组蛋白去乙酰化酶SIRT-1和SIRT-2参与猪卵泡形成发育及闭锁过程的研究 | 第127-143页 |
| 摘要 | 第127-129页 |
| 1 材料与方法 | 第129-132页 |
| 1.1 材料 | 第129页 |
| 1.2 试剂 | 第129页 |
| 1.3 仪器 | 第129页 |
| 1.4 实验方法 | 第129-132页 |
| 2 结果 | 第132-138页 |
| 2.1 SIRT-1和SIRT-2在卵母细胞巢裂解和原始卵泡形成过程中的表达和定位特征 | 第132-135页 |
| 2.2 猪卵巢卵泡壁的退化和颗粒细胞的凋亡过程中SIRT-1和SIRT-2的表达与定位 | 第135-138页 |
| 3 讨论 | 第138-139页 |
| 参考文献 | 第139-143页 |
| 第七章 组蛋白乙酰化酶CBP/P300参与猪卵泡形成发育及闭锁过程的研究 | 第143-157页 |
| 摘要 | 第143-145页 |
| 1 材料与方法 | 第145-148页 |
| 1.1 材料 | 第145页 |
| 1.2 试剂 | 第145页 |
| 1.3 仪器 | 第145-146页 |
| 1.4 实验方法 | 第146-148页 |
| 2 结果 | 第148-153页 |
| 2.1 CBP/p300卵母细胞巢裂解和原始卵泡形成过程中的表达和定位 | 第148-151页 |
| 2.2 猪卵巢卵泡壁退化和颗粒细胞凋亡过程中CBP/p300的表达与定位 | 第151-153页 |
| 3 讨论 | 第153-154页 |
| 参考文献 | 第154-157页 |
| 第八章 HISTONE H3及其乙酰化修饰参与猪卵泡形成发育及闭锁过程的研究 | 第157-173页 |
| 摘要 | 第157-159页 |
| 1 材料与方法 | 第159-163页 |
| 1.1 材料 | 第159-160页 |
| 1.2 试剂 | 第160页 |
| 1.3 仪器 | 第160页 |
| 1.4 实验方法 | 第160-163页 |
| 2 结果 | 第163-169页 |
| 2.1 Histone H3和Ac-Histone H3卵母细胞巢裂解和原始卵泡形成过程中的表达和定位 | 第163-167页 |
| 2.2 猪卵巢卵泡壁的退化和颗粒细胞的凋亡过程中Histone H3与Ac-Histone H的表达与定位 | 第167-169页 |
| 3 讨论 | 第169-170页 |
| 参考文献 | 第170-173页 |
| 全文结论 | 第173-175页 |
| 创新点 | 第175-177页 |
| 附录 主要溶液的配制 | 第177-181页 |
| 攻读博士期间发表及待发表的论文 | 第181-183页 |
| 致谢 | 第183页 |
