| 缩略词 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第11-18页 |
| 1.1 多聚免疫球蛋白受体(pIgR)的结构和功能 | 第11-12页 |
| 1.2 多聚免疫球蛋白受体与艾滋病 | 第12-16页 |
| 1.3 恒河猴艾滋病模型与HIV/AIDS研究 | 第16-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-23页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第19-21页 |
| 2.1.3 溶液配制 | 第21-22页 |
| 2.1.4 细胞培养液配制 | 第22页 |
| 2.1.5 试验用细胞 | 第22页 |
| 2.1.6 动物组织 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-32页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第23-24页 |
| 2.2.2 组织总RNA的提取 | 第24-25页 |
| 2.2.3 细胞总RNA的提取 | 第25页 |
| 2.2.4 PCR扩增 | 第25-27页 |
| 2.2.5 SDS-PAGE凝胶电泳 | 第27-30页 |
| 2.2.6 免疫组织化学 | 第30-31页 |
| 2.2.7 细胞免疫荧光检测 | 第31页 |
| 2.2.8 数据分析与统计软件 | 第31-32页 |
| 3 实验结果 | 第32-52页 |
| 3.1. 恒河猴胃肠道pIgR茌SHIV/SIV感染后的变化 | 第32-42页 |
| 3.1.1 正常和感染恒河猴胃肠道粘膜中pIgR的分布 | 第32-40页 |
| 3.1.2 pIgR在正常和感染恒河猴胃肠粘膜上皮中的表达水平 | 第40页 |
| 3.1.3 正常和感染恒河猴胃肠道粘膜组织中pIgR的表达水平 | 第40-42页 |
| 3.2. 恒河猴气管和肺组织中pIgR在SHIV/SIV感染后的变化 | 第42-52页 |
| 3.2.1 恒河猴气管和肺组织中pIgR mRNA的表达水平在SHIV/SIV感染后的变化 | 第42-43页 |
| 3.2.2 正常和感染恒河猴气管和肺组织中pIgR的分布 | 第43-46页 |
| 3.2.3 气管上皮细胞中pIgR的表达水平在SHIV/SIV感染后的变化 | 第46页 |
| 3.2.4 恒河猴气管和肺组织中pIgR表达水平在SHIV/SIV感染后的变化 | 第46-47页 |
| 3.2.5 IL-17A mRNA在正常和感染动物气管中的表达水平 | 第47-48页 |
| 3.2.6 IL-17A mRNA在正常和感染恒河猴肺组织中的表达水平 | 第48-49页 |
| 3.2.7 IL-17A对HBE细胞中pIgR mRNA表达水平的影响 | 第49页 |
| 3.2.8 IL-17A对HBE细胞中pIgR蛋白分子的分布和表达水平的影响 | 第49-52页 |
| 讨论 | 第52-56页 |
| 结论 | 第56-57页 |
| References | 第57-64页 |
| 文献综述 | 第64-74页 |
| 参考文献 | 第70-74页 |
| 个人简历 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75页 |
